脂滴蓝色荧光检测试剂盒(LipiD-Blue)
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产品编号 C2052S
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¥ 698.00
产品包装:
100-1000次 500-5000次
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碧云天的脂滴蓝色荧光检测试剂盒(LipiD-Blue),英文名为Lipid Droplet Blue Fluorescence Assay Kit with LipiD-Blue,也称LipiD-Blue Staining Kit或Blue Neutral Lipid Stain,是一种基于新型荧光探针LipiD-Blue来检测细胞内脂滴(Lipid droplets)的试剂盒。本试剂盒适用于荧光显微镜、流式细胞仪、荧光酶标仪等荧光检测系统。

脂滴是由磷脂单分子层及甘油三酯(Triglyceride)、胆固醇酯(Cholesteryl ester)组成的中性脂肪(Neutral lipid)疏水核心构成,广泛存在于动物、细菌、酵母、植物和昆虫细胞中[1]。脂滴能够沿着细胞骨架运动,并与其它细胞器相互作用,在脂类代谢与存储、膜转运、蛋白降解、以及信号传导过程中起着重要的作用。多种代谢性疾病,如肥胖、脂肪肝、心血管疾病及糖尿病、中性脂贮存性疾病和Niemann Pick C疾病等,可能都伴随着脂质贮存的异常[2]。

本试剂盒所使用的荧光探针为LipiD-Blue,也称Lipi-Blue,是一种亲脂性染料,适用于脂滴的标记和成像。LipiD-Blue具有良好的光稳定性和适宜的荧光光谱,可与多种常用荧光染料(如GFP和AF555等)兼容,支持多色成像的需求。此外,LipiD-Blue同时适用于固定的细胞和活细胞,并具有较低背景。

LipiD-Blue在细胞中最大激发光波长约为385nm,最大发射光波长约为423nm。LipiD-Blue在NRK-52E细胞中的激发光和发射光光谱参考图1。

图1.LipiD-Blue在NRK-52E细胞中的激发光和发射光光谱。

本试剂盒提供的LipiD-Blue为1000X溶液,该溶液经过优化,对大多数细胞都适用,但为了得到满意的结果,对于不同类型的细胞请自行进行一定摸索,LipiD-Blue的终浓度通常为0.5X-5X,最优先的推荐终浓度为1X。本试剂盒提供了绿色细胞核染料Nuclear Green LCS,可染色活细胞或固定后的细胞,方便观察所有的细胞核,Nuclear Green LCS的最大激发波长约510nm,最大发射波长约为535nm。

LipiD-Blue在水和其它极性溶剂中几乎无任何荧光,一旦与甘油三酯等中性脂肪结合,便发出明亮的蓝色荧光。使用本试剂盒检测细胞内脂滴的效果请参考图2。

图2.碧云天脂滴蓝色荧光检测试剂盒(LipiD-Blue) (C2052)检测NRK-52E细胞内脂滴的效果图。图A为正常NRK-52E细胞在显微镜明场下的形态,正常细胞内无明显的脂滴聚集现象,因此经LipiD-Blue (图B)染色后呈较弱的荧光,主要为散在的微小脂滴染色;图E为使用400µM油酸(Oleic acid) (ST2053)诱导24小时后细胞在显微镜明场下形态,此时细胞内有很明显的脂滴聚集,脂滴经过LipiD-Blue染色后,呈现非常明亮的蓝色荧光(图F)。图C和图G呈现了细胞核Nuclear Green LCS的染色效果,图D、H为LipiD-Blue和Nuclear Green LCS荧光染色的叠加图。实际检测效果会因实验条件、检测仪器的不同而存在差异,本图仅供参考。

本试剂盒染色细胞后用于流式检测的效果请参考图3。

图3.碧云天脂滴蓝色荧光检测试剂盒(LipiD-Blue) (C2052)用于流式细胞仪检测的效果图。HeLa细胞经400µM油酸诱导24小时后,使用本试剂盒中的LipiD-Blue进行染色并进行流式检测。灰色峰为LipiD-Blue弱染色的HeLa细胞(同样经400µM油酸诱导24小时但未诱导形成明显脂滴的细胞),蓝色峰为LipiD-Blue强染色的HeLa细胞(同样经400µM油酸诱导24小时但诱导形成明显脂滴的细胞)。实际检测效果会因实验条件、检测仪器的不同而存在差异,本图仅供参考。

对于96孔板中的样品,按照每孔使用100μl染色液计算,本试剂盒小包装和中包装分别可以进行1000次和5000次检测;如果用于流式细胞仪检测,按照每个样品的检测体系体积为0.5ml时,本试剂盒小包装和中包装分别可以进行200次和1000次检测;对于6孔板中的贴壁培养细胞样品,按照每孔使用1ml染色液计算,本试剂盒小包装和中包装分别可以进行100次和500次检测。

包装清单:
产品编号 产品名称 包装
C2052S-1 LipiD-Blue (1000X) 0.1ml
C2052S-2 Nuclear Green LCS (1000X) 0.1ml
说明书 1份

产品编号 产品名称 包装
C2052M-1 LipiD-Blue (1000X) 0.5ml
C2052M-2 Nuclear Green LCS (1000X) 0.5ml
说明书 1份
保存条件:

-20ºC保存,至少一年有效。LipiD-Blue (1000X)和Nuclear Green LCS (1000X)须避光保存。

注意事项:

第一次使用时LipiD-Blue (1000X)和Nuclear Green LCS (1000X)建议适当分装,避免反复冻融。

LipiD-Blue的工作浓度、细胞量、孵育温度和时间等可根据所使用的细胞进行适当摸索和优化,例如LipiD-Blue的浓度对于细胞染色可在0.5X-5X之间适当调整,对于流式细胞仪检测可在0.1X-1X之间适当调整。

LipiD-Blue在激光照射下易发生淬灭,因此需要在保证荧光亮度的前提下尽可能降低染料使用浓度,降低荧光显微镜激发光强度,缩短拍照时间。

荧光染料均存在淬灭问题,请尽量注意避光,以减缓荧光淬灭。

本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。

为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

使用说明:
1.染色液的配制。
按照6孔板每孔1ml脂滴染色液的体系,参考下表配制适量的染色液,并充分混匀。
Reagent 1 Sample 10 Samples 100 Samples
LipiD-Blue (1000X) 1μl 10μl 100μl
Nuclear Green LCS (1000X) 1μl 10μl 100μl
Assay Buffer 998μl 9.98ml 99.8ml
Staining Solution 1ml 10ml 100ml
注1:配制好的Staining Solution必须一次使用完毕,不建议冻存或4ºC保存后继续使用。
注2:对于活细胞染色,建议使用含血清的培养液作为Assay Buffer;对于固定细胞染色,可使用PBS (C0221A)作为Assay Buffer。Assay Buffer可能会对染色结果有一定影响,可根据具体实验情况进行一定的摸索或优化。染色液中LipiD-Blue的浓度对于细胞染色可在0.5X-5X之间适当调整,对于流式细胞仪检测可在0.1X-1X之间适当调整。
注3:Nuclear Green LCS染色为可选。
2.荧光显微镜检测。
a.接种培养。将细胞接种于6孔板等多孔板、细胞培养皿或者细胞爬片上。如有必要,按实验设计对细胞进行一定处理。
b.固定(选做)。
(a)取出待检测的细胞,使用PBS洗涤两遍,吸除PBS。
(b)加入4%多聚甲醛固定液(P0099)室温固定10-15分钟。
注1:LipiD-Blue和Nuclear Green LCS都适用于活细胞染色,也适用于固定后细胞的染色。
注2:由于醇类能够溶解脂质,因此请使用醛类固定液进行固定。
注3:如果需要进行免疫染色而进行细胞通透,须避免使用含Triton X-100或Tween-20等去垢剂的通透液,而使用不会溶解细胞膜的去垢剂如含Saponin (P0095)或Digitonin (ST1272)的通透液,但仍然可能会一定程度的影响脂滴的形态。
c.染色。
(a)取出待检测的细胞,PBS洗涤1-2遍。
(b)吸除PBS,加入适当体积的Staining Solution,通常96孔板每孔加入100μl,24孔板每孔加入250μl,12孔板每孔加入500μl,6孔板每孔加入1ml。37ºC下避光孵育30分钟。
(c)PBS洗涤两遍。
d.检测。LipiD-Blue为蓝色荧光,最大激发光波长约为385nm,最大发射光波长约为423nm。Nuclear Green LCS为绿色荧光,最大激发波长约510nm,最大发射波长约为535nm。
注:使用荧光显微镜拍照时,为了减少荧光淬灭,尽可能降低荧光显微镜的激发光强度,缩短拍照时间。
3.流式细胞仪检测。
a.细胞准备。
(a)贴壁细胞胰酶消化后用培养液重悬,并用PBS洗涤一次;悬浮细胞250-1000×g室温离心5分钟,弃上清,用PBS洗涤一次。每个样品推荐的细胞用量为106个细胞。
(b)400×g室温离心5分钟,弃上清。
b.固定(选做)。
(a)加入4%多聚甲醛固定液(P0099),轻轻吹打重悬为单细胞悬液,室温固定10-15分钟。
(b)固定结束后,400×g室温离心5分钟,弃上清。
(c)加入0.5ml PBS后缓慢用移液器吹打洗涤,然后400×g室温离心5分钟,弃上清。
注1:LipiD-Blue和Nuclear Green LCS都适用于活细胞染色,也适用于固定后细胞的染色。
注2:由于醇类能够溶解脂质,因此请使用醛类固定液进行固定。
注3:如果需要进行免疫染色而进行细胞通透,须避免使用含Triton X-100或Tween-20等去垢剂的通透液,而使用不会溶解细胞膜的去垢剂如含Saponin (P0095)或Digitonin (ST1272)的通透液,或BeyoFC™流式检测细胞通透与洗涤液(Saponin) (C1717),但仍然可能会一定程度的影响脂滴的形态。
c.染色。
(a)对于上一步骤的细胞沉淀,除背景对照管外,其余每管加入0.5ml Staining Solution,轻柔并充分重悬细胞,37ºC避光孵育30分钟。
(b)400×g室温离心5分钟,弃上清。
(c)每孔加入0.5ml PBS后缓慢用移液器吹打洗涤,然后400×g室温离心5分钟,弃上清。
(d)每孔加入0.5ml PBS重悬细胞。
d.检测。检测时参考LipiD-Blue光谱特征选择合适的检测条件,例如Ex/Em=385/423nm。Nuclear Green LCS的Ex/Em=510/535nm。
注1:使用仅含Assay Buffer并且未经染色的细胞样品用于流式细胞仪的阴性对照设置。
注2:由于流式检测比较灵敏,使用的荧光探针浓度可能要比荧光显微镜检测时要低,此时可根据细胞类型和实际染色情况对LipiD-Blue的稀释倍数进行适当调整。
4.荧光酶标仪检测。
a.接种培养。将细胞接种于96孔板黑色多孔板中,如BeyoGold™全黑96孔细胞培养板(平底带盖, 独立包装) (FCP966),每孔的细胞数需要控制在100-10,000个,通常宜在2000-5000个范围内。按实验设计对细胞进行一定处理。
注:细胞数目可根据荧光强度进行调整。细胞也可接种于其他细胞培养板中,经胰酶消化后收集,用于后续实验。
b.固定(选做)。
(a)取出待检测的细胞,使用PBS洗涤两遍,吸除PBS。
(b)加入4%多聚甲醛固定液(P0099)室温固定10-15分钟。
注1:LipiD-Blue和Nuclear Green LCS都适用于活细胞染色,也适用于固定后细胞的染色。
注2:由于醇类能够溶解脂质,因此请使用醛类固定液进行固定。
注3:如果需要进行免疫染色而进行细胞通透,须避免使用含Triton X-100或Tween-20等去垢剂的通透液,而使用不会溶解细胞膜的去垢剂如含Saponin (P0095)或Digitonin (ST1272)的通透液,但仍然可能会一定程度的影响脂滴的形态。
c.染色。
(a)取出待检测的细胞,使用PBS洗涤1-2遍。
(b)吸除PBS,加入适当体积的Staining Solution,通常96孔板每孔加入100μl。37ºC下避光孵育30分钟。
(c)PBS洗涤两遍。
d.检测。参考LipiD-Blue光谱特征,选取合适的波长进行读板,例如Ex/Em=385/423nm。具体根据酶标仪的特点选择,也不一定需要选用最大激发光/发射光波长来检测。Nuclear Green LCS的Ex/Em=510/535nm。
5.阳性对照的诱导方法。油酸(ST2053)可以诱导培养细胞内脂滴生成,从而可以作为阳性对照。诱导培养细胞内形成脂滴的具体方法如下。
a.37ºC条件下加热油酸,使其完全成为液体。
b.取63μl的油酸,加入到937μl的DMSO中,充分混匀,配制成200mM的油酸贮存液。贮存液可以保存在4ºC,使用时37ºC条件下加热混匀后即可使用。
c.细胞诱导前,配制含油酸的完全培养液。使用细胞的完全培养液按500:1稀释油酸贮存液,使油酸终浓度为400μM。
注:油酸具有一定的细胞毒性,因细胞而异,可以根据不同细胞状况调整油酸的使用终浓度。
d.待检测的细胞加入含油酸的完全培养液,37ºC培养过夜。一般情况下,次日可以观察到囊泡状的脂滴。
参考文献:
1.Olzmann JA, Carvalho P. Nat Rev Mol Cell Biol. 2019. 20(3):137-155.
2.Thiam AR, Farese RV Jr, Walther TC. Nat Rev Mol Cell Biol. 2013. 14(12):775-86.
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