使用说明：
1. 样品的准备：
   a. 细胞样品的准备：收集细胞，用4℃或冰浴预冷的PBS或生理盐水洗涤1-2遍。沉淀用预冷的PBS
      在4℃或冰浴进行匀浆(可以使用玻璃匀浆器或各类常见电动匀浆器)。随后匀浆液4℃离心，取
      上清作为待测样品。
   b. 组织样品的准备：动物用生理盐水(0.9% NaCl，含有0.16mg/ml肝素钠)灌流清除血液后获取组
       织样品。取适量的组织样品，加入4℃或冰浴预冷的PBS在4℃或冰浴进行匀浆(可以使用玻璃匀
      浆器或各类常见电动匀浆器)。随后匀浆液4℃离心，取上清作为待测样品。
   c. 血浆或红细胞样品的准备：用抗凝管收集血液，颠倒混匀。4℃ 600g离心10分钟，移取上清至
      另一新的1ml离心管中，适量生理盐水稀释后即可作为血浆样本进行检测。红细胞样品可以参
      考步骤1a细胞样品的制备方法，或其它不含Triton X-100等去垢剂的样品制备方法。
   d. 上述样品准备完毕后可以用碧云天生产的BCA蛋白浓度测定试剂盒(P0009/P0010/P0010S/P0011
      /P0012/P0012S)测定蛋白浓度。通常10-20微克蛋白的细胞或组织匀浆液样品其中的SOD
      平均活力约1个活力单位左右(不同细胞和组织的差异会比较大，该活力范围仅作为初步的参考)。
      每种样品准备20-100微克蛋白量通常已经足够用于后续检测。
   e. 根据蛋白浓度和预计的蛋白使用量，用本试剂盒提供的SOD检测缓冲液适当稀释样品。例如，小鼠
      肝脏组织10%匀浆液(组织和匀浆液的重量比为10%)上清，通常需要稀释10-100倍。准备好的样
      品如果当天测定，可以冰浴保存；如果当天不能完成测定，可以-70℃冻存，但建议尽量当天
      完成测定。
2. 试剂盒的准备工作：
   a. WST-8/酶工作液的配制：按照每个反应160μl的体积配置适量的WST-8/酶工作液。均匀混合
      151μl SOD检测缓冲液、8μl WST-8和1μl酶溶液，即可配置成160μl WST-8/酶工作液。根据待检
      测样品(包括标准品)的数量，配置适量的WST-8/酶工作液。具体配置方法可以参考下表。配制
      好的WST-8/酶工作液4℃或冰浴保存，可以在当天使用，但建议尽量现配现用。注意：由于酶
      溶液的用量较少且易沉降，必须注意在使用前先轻轻离心一下，然后适当混匀后再使用。

   b.反应启动工作液的配制：把试剂盒中的反应启动液(40X)融解后混匀，按照每1μl反应启动液
      (40X)加入39μl SOD检测缓冲液的比例进行稀释，混匀后即为反应启动工作液。根据待检测样品
      (包括标准品)的数量，配置适量的反应启动工作液。配制好的反应启动工作液4℃或冰浴保存，
      可以在当天使用，但建议尽量现配现用。
   c. (可选做)SOD标准品准备：需自备SOD标准品，用本试剂盒提供的稀释液将SOD标准品稀释至如下系
      列浓度：200U/ml，100U/ml，50U/ml，20U/ml，10U/ml，5U/ml，2U/ml。在随后的检测中可以
      各取20微升，参考样品进行检测。说明：为避免稀释后SOD酶活性的下降， SOD标准品宜现稀
      释现使用；本试剂盒对于SOD的检测并不需要SOD作为标准品，但可以使用SOD标准品作为阳性对
      照或作为对SOD活性定量的参考。
3. 样品测定：
   a. 参考下表使用96孔板设置样品孔和各种空白对照孔。并按下表依次加入待测样品和其它各种溶
      液。加入反应启动工作液后充分混匀。注意：加入反应启动工作液后反应即会开始，可以在低温
      操作或用排枪操作以减小各孔间因加入反应启动工作液的时间先后差异而导致的误差。

      *如果样品有颜色或含有抗氧化物质，则需设置空白对照3；如果样品没有颜色并且也不含有抗氧
      化物则没有必要设置空白对照3。
   b. 37℃孵育30分钟。说明：孵育25至35分钟检测出来的SOD活力无显著差异，但为保证检测结果的
      一致性，推荐孵育30分钟。
   c. 在450nm测定吸光度。如无450nm滤光片，可以使用420-480nm的滤光片。可以使用大于600nm的波
      长作为参考波长进行双波长测定。
4. 样品中总SOD活力的计算：
   a. 抑制百分率的计算：
      参考如下计算公式计算抑制百分率：
      抑制百分率＝[(A_{空白对照1}－A_{空白对照2})－(A_样品－A_{空白对照3})]/(A_{空白对照1}－A_{空
      白对照2})×100%
      如果没有设置空白对照3，则可以把计算公式简化为：
      抑制百分率＝(A_{空白对照1}－A_样品)/(A_{空白对照1}－A_{空白对照2})×100%
      如果计算出来的抑制百分率小于30%或大于70%，则通常需要把该样品重新测定。尽量使样品的抑
      制百分率在30-70%范围内。如果测定出来的抑制百分率偏高，则需适当稀释样品；如果测定出来
      的抑制百分率偏低，则需重新准备浓度较高的待测样品。
   b. SOD酶活力单位的定义：在上述黄嘌呤氧化酶藕联反应体系中抑制百分率为50%时，反应体系中的
      SOD酶活力定义为一个酶活力单位(unit)。注意：SOD的活力单位的定义方式有很多种，不同的活
      力单位需根据其定义的不同进行适当换算。
   c. SOD酶活力的计算：
         
          参考上图A和B，SOD酶活力和抑制百分率呈非线性关系，而1/SOD酶活力和1/抑制百分率
      成线性关系。上图仅作参考，不同的样品不同的检测条件，实际测定获得的标准曲线的斜率和截
      距可能和上图有较明显的差别。
   SOD酶活力的计算公式如下：
      待测样品中SOD酶活力单位＝检测体系中SOD酶活力单位＝抑制百分率/(1－抑制百分率)
      units
      例如，当抑制百分率为50%时，待测样品中SOD酶活力单位＝50% / (1－50%)units＝1 unit；当抑
      制百分率为60%时，待测样品中SOD酶活力单位＝60% / (1－60%)units＝1.5 units。
   d. 如果样品为细胞或组织的匀浆液，可以根据样品的蛋白浓度和稀释倍数，将SOD活力单位换算为
      U/g或U/mg蛋白。如果样品为红细胞抽提液，可以根据血红蛋白含量，可换算为U/克血红蛋
      白或U/毫克血红蛋白。

   附1：SOD酶活力计算的参考方案：可以先使用本试剂盒绘制SOD标准品的抑制百分率曲线，然后根据
      样品检测到的抑制百分率对比标准品的抑制百分率曲线计算出样品中的SOD酶活力单位。本方案仅
      供参考，使用本试剂盒时不必使用本方案进行检测和计算。此外，本方案需确保标准品的酶活力
      数据可靠，不会因为标准品的保存问题而导致实际酶活力下降。
   附2：SOD酶活力的动力学检测：如果条件许可，使用本试剂盒时也可以使用动力学方法检测SOD的酶
      活力。通常在步骤3a后可以37℃孵育同时在450nm连续测定吸光度30分钟。根据30分钟内的吸光度
      变化的斜率计算出抑制百分率：
      抑制百分率＝[(斜率_{空白对照1}－斜率_{空白对照2})－(斜率_样品－斜率_{空白对照3})]/(斜率_{空白对照
      1}－斜率_{空白对照2})×100%
      其余的计算方法同上述非动力学的计算方法。动力学方法的检测和计算更加精确一些，但检测起
      来相对要麻烦一些。使用本试剂盒通常使用非动力学方法即可。

使用本产品的相关论文：
1. Zhao J, Xu S, Song F, Nian L, Zhou X, Wang S.
   2,3,5,4'-tetrahydroxystilbene-2-O-β-D-glucoside protects human umbilical vein endothelial
   cells against lysophosphatidylcholine-induced apoptosis by upregulating superoxide
   dismutase and glutathione peroxidase.
   IUBMB Life. 2014 Oct;66(10):711-22. doi: 10.1002/iub.1321. Epub 2014 Nov 7.
2. Zhao H, Wang R, Tao Z, Yan F, Gao L, Liu X, Wang N, Min L, Jia Y, Zhao Y, Ji X, Luo Y.
   Activation of T-LAK-cell-originated protein kinase-mediated antioxidation protects against
   focal cerebral ischemia-reperfusion injury.
   FEBS J. 2014 Oct;281(19):4411-20. doi: 10.1111/febs.12948. Epub 2014 Aug 15.