使用说明：
1. 试剂盒的准备工作：
a.GSH储备液的配制：在本试剂盒提供的4.5mg GSH中加入1.5毫升Milli-Q级纯水，溶解并混匀，即为GSH储备液，浓度为10mM。除立即待用部分外，其余GSH储备液适当分装后-20℃保存。
b.DTNB储备液的配制：在本试剂盒提供的4.5mg DTNB中加入1.5毫升本试剂盒提供的DMSO，溶解并混匀，即为DTNB储备液。除立即待用部分外，其余DTNB储备液适当分装后-20℃保存。
c.蛋白去除试剂S溶液的配制：在本试剂盒提供的0.4克蛋白去除试剂S中加入8毫升Milli-Q级纯水，配制成8毫升5%的水溶液。4℃保存。
d.NADPH储备液(40mg/ml)的配制：在本试剂盒提供的4mg NADPH中加入100微升Milli-Q级纯水，溶解并混匀，即为NADPH储备液。除立即待用部分外，其余NADPH储备液适当分装后-70℃保存。
e.5倍稀释谷胱甘肽还原酶的配制：取50微升谷胱甘肽还原酶，加入200微升总谷胱甘肽检测缓冲液，混匀，即成5倍稀释的谷胱甘肽还原酶。
f.总谷胱甘肽检测工作液的配制：根据待检测的样品数参考下表配制适当量的总谷胱甘肽检测工作液，表中三种试剂按比例混合后即为总谷胱甘肽检测工作液。

g.0.5mg/ml NADPH的配制：取10微升NADPH储备液，加入790微升总谷胱甘肽检测缓冲液，混匀即为0.5mg/ml NADPH。每检测一个样品需50微升0.5mg/ml NADPH。
2. 标准品的准备：
把10mM GSH储备液用蛋白去除试剂S溶液稀释成50μM GSH溶液。然后依次稀释成25、15、10、5、2μM GSH溶液。取50、25、15、10、5、2μM GSH溶液六个点做标准曲线。注意：由于GSH在蛋白去除试剂S溶液中不太稳定，用蛋白去除试剂S溶液配制的GSH溶液必须新鲜配制后使用，不可冻存后再使用。
3. 样品的准备：
a.组织样品的准备。取组织用液氮速冻，然后研成粉末。每10毫克研碎的组织粉末，加入30微升蛋白去除试剂S溶液，充分Vortex。再加入70微升蛋白去除试剂S溶液，用玻璃匀浆器充分匀浆(对于比较容易匀浆的组织可以不用液氮速冻等处理，而直接加入适量蛋白去除试剂S溶液进行匀浆)。4℃放置10分钟后，10,000g 4℃离心10分钟，取上清用于总谷胱甘肽的测定。样品需暂时4℃保存，不立即测定的样品可以-70℃保存，但不宜超过10天。对于处理好的组织样品通常需用蛋白去除试剂S溶液进行适当稀释后再进行测定，稀释倍数通常为5-20倍。
b.细胞样品的准备。请尽量使用新鲜的细胞进行测定，而不要使用冻存的细胞进行测定。PBS洗涤细胞一次，离心收集细胞，吸尽上清。加入细胞沉淀体积3倍量的蛋白去除试剂S溶液，即如果细胞沉淀为10微升，则加入30微升蛋白去除试剂S溶液，充分Vortex。(细胞沉淀的体积可以根据细胞沉淀的重量进行估算。收集细胞前后分别对离心管进行称重，从而就可以计算出细胞沉淀的重量。10毫克细胞沉淀的体积可以粗略地看做10微升。) 然后利用液氮和37℃水浴对样品进行两次快速的冻融。4℃或冰浴放置5分钟。4℃，10,000g离心10分钟。取上清用于总谷胱甘肽的测定。样品需暂时4℃保存，不立即测定的样品可以-70℃保存，但不宜超过10天。对于处理好的细胞样品通常需用蛋白去除试剂S溶液进行适当稀释后再进行测定，稀释倍数可以高达20倍。
c.红细胞或血浆样品的准备。请尽量使用新鲜的血液进行测定。600g离心10分钟，沉淀为红细胞，上清为血浆。对于红细胞，用PBS洗涤两次。取约50微升红细胞沉淀或血浆，加入50微升蛋白去除试剂S溶液，充分Vortex。4℃或冰浴放置10分钟。4℃，10,000g离心10分钟。取上清用于总谷胱甘肽的测定。样品需暂时4℃保存，不立即测定的样品可以-70℃保存，但不宜超过10天。对于处理好的红细胞样品最后需用蛋白去除试剂S溶液稀释10倍后再进行后续的测定，而对于血浆样品，应直接取10微升进行测定。
d.对于一些谷胱甘肽含量特别低的样品，可以通过冷冻干燥进行浓缩后再进行测定。
4. 样品和标准品的测定：
a.参考下表，使用96孔板，依次加入样品或标准品，混匀。加入150微升总谷胱甘肽检测工作液后，混匀，25℃或室温孵育5分钟。

b.加入50微升0.5mg/ml NADPH溶液，混匀。
c.立即用酶标仪测定A₄₁₂，每5分钟测定一次或实时测定，共测定25分钟，测得5个数据。(说明：为了简化实验步骤，可以在加入NADPH溶液混匀后25分钟，仅测定一次A₄₁₂)。如果仪器可以设置温度，把温度设置在25℃，否则就在室温状况下测定。如果酶标仪不能测定A₄₁₂，可以测定405-414nm附近范围的吸光度。如果标准曲线良好，但样品的吸光度比较低，可以延长孵育时间至30-60分钟，标准品和样品的吸光度在一定范围内会随时间的延长接近于线性增加的。
d.标准品的实测效果参考图1。

图1. GSH标准曲线实测效果图。图中数据仅供参考，实际的检测效果可能会因具体反应条件的不同而有所不同。
5. 样品中总谷胱甘肽含量的计算：
a.单点测定法：即反应25分钟(或30-60分钟)后仅测定一次吸光度。根据不同浓度标准品测得的不同吸光度作出标准曲线。样品对照标准曲线即可计算出总谷胱甘肽的含量。实际计算出来的总谷胱甘肽的含量相当于把氧化型谷胱甘肽的含量乘以2再加上还原型谷胱甘肽的含量。单点法测定相对比较便捷，而动力学法测定则相对比较精确。
b.动力学测定法：先根据不同时间点测定得到的吸光度值计算出ΔA₄₁₂/min。然后以标准品的浓度为横坐标，以ΔA₄₁₂/min为纵坐标，做出标准曲线。根据样品的ΔA₄₁₂/min，对照标准曲线就可以计算出测定时样品中总谷胱甘肽的含量。
c.同时根据样品的稀释倍数、以及最初样品的使用量，可以计算出每毫克组织或细胞中的总谷胱甘肽的含量。对于细胞样品，也可以根据最初细胞的使用数量，然后另外取一定数量的细胞裂解后测定蛋白浓度，从而计算出细胞样品的蛋白量，最后计算出每毫克蛋白中总谷胱甘肽的含量。

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