碧云天研发的苹果酸脱氢酶活性检测试剂盒(WST-8法) (Malate Dehydrogenase Activity Assay Kit with WST-8, Malate Dehydrogenase Assay Kit with WST-8 or MDH Assay Kit with WST-8)，简称MDH活性检测试剂盒或MDH检测试剂盒，是一种基于WST-8的显色反应，通过比色法，快速、高灵敏地对组织或细胞样品以及血清和血浆等生物体液等样品中苹果酸脱氢酶活性进行检测的试剂盒。

苹果酸脱氢酶(Malate dehydrogenase, MDH)是细胞内的一种氧化还原酶，广泛存在于动物、植物、微生物等生物体中，是生物糖代谢的关键酶之一，能催化苹果酸和草酰乙酸的相互转化。MDH在细胞的多种生理活动中起着重要的作用，包括线粒体的能量代谢、苹果酸-天冬氨酸穿梭系统及植物的活性氧代谢等[1]。

苹果酸脱氢酶有多种同工酶，但在真核细胞中有两种主要的异构体，即存在于线粒体中的m-MDH和存在于细胞质的c-MDH。m-MDH在线粒体中主要催化苹果酸脱氢(氧化)，是三羧酸循环中的重要酶之一，对体内营养物质的彻底氧化或相互转变均起重要作用；c-MDH定位于胞质，主要催化草酰乙酸加氢(还原)，是苹果酸-天冬氨酸穿梭系统保证胞质中糖酵解生成的NADH进入线粒体、彻底氧化产能的重要酶类[1,2]。MDH在维持机体的正常生命活动中扮演着重要的角色，临床研究表明在心肌梗死初期和病毒性肝炎初期血清MDH活性都会明显升高，此外在肾脏疾病、类风湿和风湿性疾病、创伤性休克、血液系统疾病等，也可见血清MDH活性不同程度的升高。因此，MDH的活力测定对于了解相关的代谢状况以及对于临床相关疾病诊断、预防等具有重要意义。

本试剂盒的检测原理如图1所示。在苹果酸脱氢酶(Malate dehydrogenase, MDH)的作用下，L-苹果酸(L-Malate)被氧化生成草酰乙酸(Oxalacetic acid, OAA)，在这一反应过程中NAD+被还原为NADH；生成的NADH在电子耦合试剂1-mPMS (1-Methoxy-5-methylphenazinium methyl sulfate)的作用下将WST-8还原生成橙黄色的Formazan，在450nm左右有最大吸收峰。反应体系中生成的Formazan与样品中苹果酸脱氢酶的活力成正比。

图1.碧云天苹果酸脱氢酶活性检测试剂盒(WST-8法) (S0514)检测原理图。

本试剂盒检测灵敏度高，线性范围宽，样品用量少。本试剂盒在样品体积为20µl时可以检测活性低至13µU的苹果酸脱氢酶，在0.67-33.3U/L活力范围内有良好的线性关系。本试剂盒提供了苹果酸脱氢酶作用产物NADH的标准溶液，可以通过设置标准曲线(图2)，从而计算出样品中的苹果酸脱氢酶的活力。

图2.碧云天苹果酸脱氢酶活性检测试剂盒(WST-8法) (S0514)对NADH标准曲线、阳性对照、HeLa细胞及小鼠不同组织样品的检测效果。左图为本试剂盒对标准品NADH的检测效果，在20-1000μM浓度范围内有良好的线性关系；右图为阳性对照(Positive control)、0.4μg蛋白量HeLa细胞样品(HeLa cell)、0.6μg蛋白量小鼠肌肉裂解样品(Mouse muscle)和0.8μg小鼠肝脏裂解样品(Mouse liver)在反应30分钟内的吸光度变化图。实测数据会因实验条件、检测仪器等的不同而存在差异，图中数据仅供参考。

本试剂盒提供的检测裂解液有一定的通用性。使用本试剂盒中的BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay裂解获得的细胞或组织样品，也可以用于碧云天生产的其它代谢类试剂盒中同样使用BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay进行裂解的样品检测，通用性强；而且还可用于检测蛋白浓度、进行SDS-PAGE或一些较易溶解蛋白的Western检测。

本试剂盒使用灵活，检测速度快，适用范围广。本试剂盒可用于小鼠、大鼠、人等的血清、血浆等生物体液、细胞培养上清以及组织或细胞等样品的检测，全程约1小时即可完成。本试剂盒不仅适合少量样本的检测，也非常适合高通量筛选(High-throughput screening)的自动化操作系统。

按照使用说明操作，用于96孔板检测时，本试剂盒小包装可以进行100次检测。

包装清单：

产品编号	产品名称	包装
S0514S-1	BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay	20ml
S0514S-2	MDH检测缓冲液	20ml
S0514S-3	阳性对照(100X)	20μl
S0514S-4	显色液	200μl
S0514S-5	底物	200μl
S0514S-6	NADH	5mg
－	说明书	1份

保存条件：

-20ºC保存，一年有效。其中显色液、底物及NADH须避光保存。NADH配制成溶液后，须适当分装后-80ºC保存。

注意事项：

BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay、MDH检测缓冲液(后续简称检测缓冲液)、显色液和底物需要完全解冻并平衡至室温后再使用，否则会影响检测结果。其它试剂在使用时应在冰上进行。

底物从-20ºC拿出在融解过程中可能会有析出，平衡至室温后析出的部分会溶解，不会对检测结果产生影响。

NADH不太稳定，配制成溶液后，须适当分装后于-80ºC保存，并尽快使用。如果发现标准曲线不理想，很有可能是标准品NADH发生了降解。

血清等样品如在4ºC保存，保存时间不得超过2周，否则会影响检测结果的准确性。通常血清样品宜-20ºC保存，-80ºC保存更佳。

为减少稀释液产生的背景带来的误差，样品和标准品的稀释液应该根据样品的种类来定。当样品为BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay制备的细胞或组织的裂解样品时，应使用BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay稀释，当样品为血液等其他样品时，宜使用检测缓冲液稀释。

本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

使用说明：
1.样品的准备：
a.血液样品的准备：对于血清样品，将全血在常温如25ºC下放置30分钟至2小时，不要剧烈摇晃以免溶血，待全血自然凝固并析出血清后，4ºC约1000-2000×g离心10分钟，取黄色上清即得血清，注意不要吸取白色或淡黄色沉淀；对于血浆样品，将全血用肝素或者EDTA进行抗凝，4ºC约1000-2000×g离心10分钟，取黄色或淡黄色上清即得血浆，注意不要吸取白色沉淀。血清和血浆都需置于冰上，如果不能立即检测，也可以分装并短期保存于-20ºC或-80ºC。对于冻存的样品，在检测前解冻后冰浴存放备用，使用前必须混匀。
b.细胞或组织样品的准备：对于培养的贴壁细胞，PBS (C0221A)洗涤一次并吸净残留液体。对于培养的悬浮细胞，先适当离心(如100-500×g, 5分钟)收集细胞到离心管内，弃上清并吸净残留液体。按照每100万细胞加入100-200μl BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay的比例加入裂解液，适当吹打，冰浴5-10分钟以充分裂解细胞。4ºC约12,000×g离心3-5分钟，取上清用于后续检测。对于组织样品，按照每10mg组织加入100μl BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay的比例，使用TissueMaster™高通量组织研磨仪(1.5/2ml×48) (E6618)、TissueMaster™手持式组织研磨仪(E6600)或玻璃匀浆器在约4ºC或冰浴等低温条件下进行匀浆。4ºC约12,000×g离心3-5分钟，取上清用于后续检测。以上所有操作均需在4ºC或冰上操作。制备好的细胞或组织样品如果不能立即检测，可以-20ºC或-80ºC冻存。
c.细胞培养上清样品的准备：对于贴壁细胞，直接取培养液；对于悬浮细胞，离心取培养液。
2.试剂盒的准备：
a.融解BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay、检测缓冲液、显色液和底物，平衡至室温后混匀备用。其它试剂存放于冰浴备用，使用完毕后宜立即按照试剂盒要求的条件保存。
b.10mM NADH标准溶液的配制：在本试剂盒提供的5mg NADH中加入655μl检测缓冲液，充分溶解并混匀，即为10mM的NADH标准溶液。除待用部分外，其余NADH标准溶液适当分装后-80ºC避光保存。
c.显色工作液(Working Solution)的配制：按照每个检测反应80μl的体积配制适量的显色工作液。均匀混合76μl检测缓冲液(MDH Assay Buffer)、2μl显色液(Chromogen Solution)、2μl底物(Substrate)，即可配制成80μl显色工作液(Working Solution)。根据待检测样品(包括标准品)的数量，配制适量的显色工作液。具体配制方法参考下表。配制好的显色工作液如果置于4ºC或冰浴避光保存，可以在当天使用，但建议尽量现配现用。

Samples	1	10	20	50
MDH Assay Buffer (μl)	76	760	1520	3800
Chromogen Solution (μl)	2	20	40	100
Substrate (μl)	2	20	40	100
Working Solution (μl)	80	800	1600	4000

注：当样品有背景会对检测产生干扰时，需同时设置样品背景对照孔，加入不含底物的显色工作液，即配制显色工作液时2µl底物用MDH检测缓冲液替代。计算时样品孔的读数需要减去样品背景对照孔的读数。
3.样品测定：
a.NADH标准曲线设置：取10μl NADH标准溶液(10mM)，加入90μl检测裂解液或检测缓冲液(如果检测BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay制备的细胞或组织裂解样品，使用BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay ；如果检测血液、上清等无需处理的样品，使用检测缓冲液)，混匀，配制成浓度为1mM的NADH标准溶液。分别取1mM的NADH标准溶液0、2、4、8、12、16、20μl加入96孔板的标准品孔中，并用对应的BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay 或检测缓冲液补足至20μl，此时标准曲线的浓度为0、100、200、400、600、800、1000μM。
b.阳性对照的设置：根据待测样品的种类，使用BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay 或检测缓冲液将阳性对照稀释100倍，然后取20μl加入96孔板作为阳性样品。例如取阳性对照1μl，加入检测裂解液99μl，混匀后取20μl加入96孔板作为阳性样品。
c.加1-20μl样品或稀释后的样品到96孔板样品孔中，并相应地再加入检测裂解液或检测缓冲液至样品孔中，补足到20µl。同时设置仅含检测裂解液或检测缓冲液的孔为空白对照。
注：为确保数值在标准曲线范围内，建议进行预实验将样品同时设定多个稀释倍数，以确定样品的大致浓度。如果数值不在标准曲线范围内，可调整样品的稀释倍数或者增加样品的量。如果检测BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay制备的细胞或组织裂解样品，使用BeyoLysis™ Buffer A for Metabolic Assay稀释；如果检测血液、上清等无需裂解处理的样品，使用检测缓冲液稀释。此处的样品总稀释倍数记为n (例如本步骤中对样品进行了10倍稀释，加入的“稀释后的样品”为10µl，则n=10×20/10=20)。
d.各孔加入显色工作液80μl，混匀。
e.立即使用适当的酶标仪或微量紫外分光光度计测定A450，此时记录为0分钟读值A1。
f.37ºC反应10-30分钟，反应时间记为T，测定A450，记为A2。信号的增强取决于MDH催化产生的NADH量，ΔA = A2 – A1。
注：为取得最佳的检测效果，反应时间可以根据待测样品中的MDH活性进行调整，但是必须确保读数在标准曲线范围内。对于MDH活性较高的样品，建议测定总时间为20分钟或30分钟，对应的测定间隔时间设为2分钟或5分钟；对于MDH活性较低的样品，可以延长测定总时间为1至2小时，对应的测定间隔时间设为10或20分钟。也可以连续测定30分钟，每隔1或2分钟测定1次，最后取呈线性的时间点前的数据用于分析和计算。
g.建立NADH标准曲线，将ΔA代入标准曲线，即可算出在反应时间内样品中MDH催化产生的NADH浓度B。NADH标准曲线可以参考图2，在20-1000μM浓度范围内有良好的线性关系。MDH的计算公式如下：
MDH Activity (U/L) = B × n / T
注：B为步骤3g根据标准曲线确定的NADH浓度(µM)；
n为步骤3c样品总稀释倍数；
T为步骤3f的反应时间(min)。
苹果酸脱氢酶酶活力单位的定义：1个酶活力单位(unit, U)在37ºC条件下，在1分钟内可以催化生成1µmol NADH。
参考文献：
1.Minárik P, Tomásková N, Kollárová M, Antalík M. Gen Physiol Biophys. 2002. 21(3): 257-265.
2.Musrati RA, Kollárová M, Mernik N, Mikulásová D. Gen Physiol Biophys. 1998. 17(3): 193-210.
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