碧云天研发的黄嘌呤氧化酶抑制剂筛选试剂盒(WST-8法)，即Xanthine Oxidase Inhibitor Screening Kit with WST-8，也称XO Inhibitor Screening Kit with WST-8或XOD Inhibitor Screening Kit with WST-8，是一种基于WST-8的显色反应，利用吸光度检测，简单、快速、灵敏地用于黄嘌呤氧化酶抑制剂高通量筛选的试剂盒。

黄嘌呤氧化酶(Xanthine oxidase, XO or XOD)是体内核酸代谢中的一种重要酶，可以催化次黄嘌呤氧化为黄嘌呤，并能进一步催化黄嘌呤氧化为尿酸，同时产生过氧化氢以及超氧化物阴离子的一系列氧化反应，在包括人类在内的一些物种中的嘌呤分解代谢中起着重要作用[1]。在人类及其它灵长类动物中，XO通常存在于血清、肺、肝脏和肠黏膜中。在啮齿类动物中，XO在大部分组织中均有表达。血液中XO的活性通常都很低。当感染甲型流感时，血清及肺部的XO活性会增加[2]。当肝功能受损时，XO会大量释放到血液中，因此检测血液中XO水平被作为一个评估严重肝损伤(例如黄疸)的灵敏指标[3]。XO也可能与痛风的发病机理相关，黄嘌呤氧化酶是尿酸形成的代谢途径，因此使用黄嘌呤氧化酶抑制剂别嘌呤醇用于治疗痛风。此外，研究显示抑制XO活性可缓解心血管疾病及慢性阻塞性肺疾病[4,5]。

本试剂盒的检测原理请参考图1。底物(Substrate)在XO催化作用下产生的超氧化物阴离子(O2.-)，随后与WST类指示剂(Indicator)反应产生水溶性的甲臜染料(Formazan dye)。甲臜染料在450nm左右有最大吸收峰，通过测定450nm处的吸光度就可以非常灵敏地检测黄嘌呤氧化酶活性。如果在反应中加入黄嘌呤氧化酶抑制剂(Inhibitor)，甲臜染料的生成就会被抑制，甲臜的生成量与抑制剂的抑制效果成反比，这样就可以检测出抑制剂的抑制效果。

图1.碧云天黄嘌呤氧化酶抑制剂筛选试剂盒(WST-8法) (S0111)的原理图。

本试剂盒含抑制剂阳性对照，使用便捷。本试剂盒提供XO检测缓冲液(XO Assay Buffer)、黄嘌呤氧化酶(XO)、XO底物(XO Substrate)、阳性对照非布司他(Febuxostat)及可以被XO催化产生荧光的指示剂(XO Indicator)。阳性对照Febuxostat是一种选择性的非嘌呤类XO抑制剂，临床上常用于痛风及高尿酸血症的治疗。通常Febuxostat的IC50约为2nM-20nM，使用本试剂盒检测Febuxostat的效果请参考图2。

图2.碧云天黄嘌呤氧化酶抑制剂筛选试剂盒(WST-8法) (S0111)检测Febuxostat的效果图。图中Febuxostat的IC50约为5nm。实测结果可能会因样品和检测条件等的不同而存在差异，图中数据仅作参考。

本试剂盒检测速度快，检测灵敏度高。整个检测过程约40分钟即可完成。本试剂盒中XO和XO Substrate等的使用量进行了优化，不仅能检测出IC50很低的抑制剂，也能检测出IC50较高的抑制剂。

碧云天同时提供基于Amplex Red法的黄嘌呤氧化酶抑制剂筛选试剂盒(S0113)。

按照使用说明操作，用于96孔板检测时，本试剂盒的小包装可以进行100次检测。

包装清单：

产品编号	产品名称	包装
S0111S-1	XO Assay Buffer	30ml
S0111S-2	XO (20X)	30μl
S0111S-3	XO Indicator (10X)	60μl
S0111S-4	XO Substrate (10X)	60μl
S0111S-5	Febuxostat (10µM)	20μl
—	说明书	1份

保存条件：

-20ºC保存，一年有效。XO Indicator须避光保存。

注意事项：

XO Assay Buffer需要完全解冻并平衡至室温后再使用，否则会影响检测结果。XO使用时应在冰上进行。使用完毕后各试剂应立即按照试剂盒保存的条件进行保存。

待测抑制剂的溶剂可能会对检测产生干扰，推荐以XO Assay Buffer、Milli-Q级纯水(ST872)、DMSO (ST038)为溶剂配制、稀释待测抑制剂，并在对照孔中添加与抑制剂等体积的溶剂以排除干扰。如果使用其他溶剂请确保在最终的反应体系中溶剂浓度不应超过5%，如超过5%，请同时设置溶剂对照组以测试溶剂对酶活性的影响，排除干扰。

XO、XO Indicator、XO Substrate等试剂的量均比较少，在使用前请先适当离心，然后适当混匀后再使用。

本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

使用说明：
1.样品的准备：
取适量待测定的抑制剂，用XO Assay Buffer、超纯水、DMSO等适当的溶剂配制成适宜浓度的溶液，如果有必要可以配制成适当的浓度梯度待用。
注1：抑制剂的稀释和配制建议使用同一种溶剂。
注2：XO Assay Buffer需要完全解冻并平衡至室温后再使用。
2.试剂盒的准备：
a.平衡除XO以外的其它所有试剂至室温，略离心使溶液沉淀至管底，再混匀备用。XO Indicator、XO Substrate和Febuxostat可37ºC水浴0.5-2分钟促进融解。使用完毕后宜立即-20ºC保存。
b.XO (1X)的配制：按照每个样品需5μl XO (1X)配制适量的XO (1X)。取适量的XO (20X)，按照1:19的比例加入XO Assay Buffer中。例如10μl XO (20X)加入190μl XO Assay Buffer，混匀即得200μl XO (1X)。配制好的XO (1X)可在冰浴上暂时保存，1小时内酶活性基本稳定。
注：所有涉及XO的操作应在冰上进行。
c.XO Indicator (1X)的配制：按照每个样品需要5μl XO Indicator (1X)配制适量的XO Indicator (1X)。取适量的XO Indicator (10X)，按照1: 9的比例加入XO Assay Buffer中。例如10μl XO Indicator (10X)加入90μl XO Assay Buffer，混匀即得100μl XO Indicator (1X)。配制好的XO Indicator (1X) 4ºC或冰浴避光保存，当天可使用，但建议尽量现配现用。
d.XO Substrate (1X)的配制：按照每个检测需要5μl XO Substrate (1X)配制适量的XO Substrate (1X)。取适量的XO Substrate (10X)，按照1: 9的比例加入XO Assay Buffer中。例如10μl XO Substrate (10X)加入90μl XO Assay Buffer，混匀即得100μl XO Substrate (1X)。配制好的XO Substrate (1X)液4ºC或冰浴避光保存，当天可使用，但建议尽量现配现用。
e.Febuxostat溶液(Febuxostat Solution)的配制：本试剂盒提供的阳性对照抑制剂Febuxostat浓度为10μM，可以根据需要，使用与待测抑制剂一样的溶剂稀释至所需浓度或一系列浓度梯度。
3.样品测定：
a.参考下表，设置对照孔和样品孔，并按照下表依次加入样品和各溶液。加入待测样品后，混匀，37ºC孵育10分钟。

	Blank Control	100% Activity Control	Inhibitor Control	Sample Group
XO Assay Buffer	85µl	80µl	80µl	80µl
XO (1X)	-	5µl	5µl	5µl
Sample Solvent*	5µl	5µl	-	-
Febuxostat Solution	-	-	5µl	-
Test Inhibitors	-	-	-	5µl
37ºC, for 10 minutes

注1：*Sample Solvent (样品溶剂)是指配制和稀释待测抑制剂(Test Inhibitors)所用的溶剂。
注2：为获得更加可靠的检测结果，建议每个样品至少应该进行2个重复孔的检测。
b.每孔加入5μl XO Indicator (1X)。
c.每孔快速加入5μl XO Substrate (1X)，混匀。
注：加入XO Substrate (1X)后反应即会开始，如果孔数较多，可以在低温下操作或使用排枪操作以减小各孔间加入XO Substrate (1X)的时间差而导致的误差，可以在培养板振荡器上进行混匀。
d.37ºC孵育30分钟。
e.在450nm测定吸光度。
4.计算:
a.计算每个样品孔和对照孔的平均吸光度值，可分别记录为ABlank Control、A100% Activity Control、AInhibitor Control和ASample。
b.计算每个样品的抑制百分率。计算公式如下：
抑制率(%) = (A100% Activity Control – ASample)/( A100% Activity Control - ABlank Control) × 100%
c.对于检测发现有效的抑制剂，通过检测该抑制剂的剂量效应就可以测定出该抑制剂的IC50。使用本试剂盒检测Febuxostat对于XO的抑制作用的检测结果请参考图2。
参考文献：
1.Hille R, Hall J, Basu P. Chem Rev. 2014. 114(7):3963-4038.
2.Hemilä H. Br J Nutr. 1992. 67(1):3-16.
3.Battelli MG, Musiani S, Valgimigli M, Gramantieri L, Tomassoni F, et al. Am J Gastroenterol. 2001. 96(4):1194-1199.
4.Dawson J, Walters M. Br J Clin Pharmacol. 2006. 62(6):633-644.
5.Heunks LM, Viña J, van Herwaarden CL, Folgering HT, Gimeno A, et al. Am J Physiol. 1999. 277(6):1697-1704.
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