BeyoRT™ Q M-MLV反转录酶
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产品编号 D7188M
数量
¥ 486.00
产品包装:
10KU 50KU 200KU
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碧云天生产的BeyoRT™ Q M-MLV反转录酶,即BeyoRT™ Q M-MLV reverse transcriptase,是一种经过改造和优化特别适合定量PCR(quantitative PCR, qPCR)的高精确度反转录酶。BeyoRT™ Q M-MLV反转录酶具有正常的依赖于RNA或DNA模板的DNA聚合酶活性,能够以RNA或DNA为模板,在引物存在的情况下进行互补DNA链的合成,即可以进行cDNA(complementary DNA)的第一链合成。同时本反转录酶还保留了RNase H活性,能选择性剪切RNA和DNA杂合双链中的RNA,有利于后续cDNA第二链的合成。

本产品是最常用的优质反转录酶之一,广泛用于获得总RNA或mRNA后cDNA第一条链的合成,特别适合用于qPCR和一步法的qRT-PCR,本产品的反转录产物也适合用于常规的PCR、cDNA的第二链合成以及cDNA文库的构建,以及逆转录所得目的基因的克隆等。BeyoRT™ Q M-MLV反转录酶还可以通过反转录用于DNA探针的荧光、生物素、地高辛或同位素标记等,也可以通过引物延伸(primer extension)来分析和研究RNA。

M-MLV (Moloney Murine Leukemia Virus),也称MMLV或M-MuLV;反转录酶(reverse transcriptase)也称逆转录酶或RT酶。

本产品反转录性能优、检测灵敏度高、扩增特异性强、反应稳定性好,不仅非常适合用于常规的RNA样品的反转录和qPCR检测或一步法qRT-PCR检测,也非常适合于內源低丰度RNA、外源病毒RNA等微量RNA的反转录及后续的qPCR检测。

利用BeyoRT™ Q M-MLV反转录酶对总RNA进行反转录,之后以不同稀释倍数的cDNA为模板,通过qPCR检测目的基因的结果请参考图1。

图1.BeyoRT™ Q M-MLV反转录酶对总RNA进行反转录后用于qPCR检测的效果图。从HEK293T细胞抽提获得的总RNA 2µg,在20μl反转录体系(2µg Total RNA, 0.5μg Oligo(dT)18 primer, 0.2μg Random Hexamer primer, 1X Reaction Buffer, 20U RNase Inhibitor, dNTP Mix (1mM each), 200U BeyoRT™ Q M-MLV反转录酶)中进行反转录,反转录后取1μl (100%)或不同稀释比例(1μl的10%、1%、0.1%、0.01%)反转录产物进行GAPDH cDNA 151bp目的片段的qPCR扩增和电泳检测。A.扩增曲线图。B.溶解曲线图。C.qPCR扩增产物的电泳图。NTC (no-template control),用水代替反转录产物。qPCR反应体系20µl,使用碧云天生产的D7260 BeyoFast™ SYBR Green qPCR Mix (2X)。实际检测效果会和特定实验条件有关,图中结果仅供参考。

来源:大肠杆菌表达纯化的经过优化改造的M-MLV反转录酶。

酶活性定义:One unit of the enzyme incorporates 1 nmol of dTTP into acid-precipitable material in 10min at 37℃ using poly(A)•oligo(dT)12-18 as template-primer。反应体系为50mM Tris-HCl (pH8.3), 75mM KCl, 3mM MgCl2, 10mM DTT, 0.5mM [3H]-dTTP and 0.4mM polyA•oligo(dT)12-18

纯度:不含DNA内切酶、外切酶和磷酸酯酶和RNA酶,可以满足常规反转录合成cDNA第一条链等的需要。

酶储存溶液:20mM Tris-HCl (pH7.5), 150mM NaCl, 0.1mM EDTA, 1mM DTT, 0.01%(v/v) NP-40 and 50%(v/v) glycerol。

失活或抑制:80℃孵育10分钟可以导致BeyoRT™ Q M-MLV反转录酶失活;EDTA、EGTA等螯合剂、无机磷酸盐或焦磷酸盐以及聚氨(polyamine)对BeyoRT™ Q M-MLV反转录酶有抑制作用。

本产品中M-MLV反转录酶的浓度为200U/µl,用于体积为20μl的反转录体系时,本试剂盒的不同包装足够分别进行50次、250次和1000次反转录反应。

关于碧云天不同反转录酶的比较和选择,可参考相关网页:http://www.beyotime.com/support/reversetranscriptase.htm

包装清单:
产品编号 产品名称 包装
D7188S-1 BeyoRT™ Q M-MLV反转录酶 50µl
D7188S-2 Reaction Buffer(5X) 0.3ml
说明书 1份

产品编号 产品名称 包装
D7188M-1 BeyoRT™ Q M-MLV反转录酶 250µl
D7188M-2 Reaction Buffer(5X) 1.2ml
说明书 1份

产品编号 产品名称 包装
D7188L-1 BeyoRT™ Q M-MLV反转录酶 1ml
D7188L-2 Reaction Buffer(5X) 5ml
说明书 1份
保存条件:

-20℃保存。

注意事项:

对于GC含量比较高的RNA的反转录,产品的使用说明中给予了特别说明,请予以关注。

本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。

为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

使用说明:
1.cDNA第一条链的合成(First-stand cDNA Synthesis)。
a.参考如下表格中设置的20μl反转录体系(RNase Inhibitor (R0102)dNTP mix (D7373)可从碧云天订购):
模板(右侧3种任选其中一种) Total RNA 0.1ng-5μg
或poly(A) RNA/mRNA 10pg-0.5μg
或specific RNA 0.01pg-0.5μg
引物(右侧3种任选其中一种) Oligo(dT)18 primer 0.5μg(或100pmol)
或Random Hexamer primer 0.2μg(或100pmol)
或gene-specific primer 15-25pmol
DEPC-treated Water - To 13.7μl*
选择性步骤:如果模板RNA的GC含量较高(例如大于55%)或者有比较严重的二级结构,混匀后微离心以把液体沉降至管底,65℃孵育5min,随后立即置于冰上冷却,以打开RNA中一些比较稳定的二级结构。
Reaction Buffer (5X) - 4μl
RNase Inhibitor (40U/μl) - 0.5μl
dNTP Mix (25mM each) - 0.8μl**
BeyoRT™ QM-MLV反转录酶 - 1μl
总体积 20μl
*To 13.7μl表示加入DEPC-treated Water至最终体积为13.7μl。
**dNTP浓度不同时使用的体积需作适当调整,此时DEPC-treated Water的用量需适当调整。
b.轻轻混匀(用移液器轻轻吹打混匀或用涡旋混合器在最低速度轻轻混匀),随后离心沉淀液体。
c.如果使用Oligo(dT)18或基因特异性引物,42℃孵育10-60min。如果使用random hexamer(随机六聚体)作为引物,先在25℃孵育10min,随后在42℃孵育10-60 min。反转录3kb以下的cDNA,反转录10min即可,反转录3-6kb的cDNA,反转录30min即可,而6kb以上的cDNA推荐反转录60min。当使用random hexamer(随机六聚体)作为引物,并且后续用于qPCR时,后续检测任何长度的基因,均反转录10min就足够了。
d.80℃孵育10 min以失活BeyoRT™ Q M-MLV反转录酶并终止反转录反应。注:对于5kb以上的长片断cDNA不推荐采用加热的方法失活反转录酶,该方法易导致部分长片断DNA被剪切,此时可考虑酚氯仿抽提或柱纯化方法。
e.反转录产物可以直接用于后续的PCR反应等,也可以-20℃冻存以备以后使用。用于后续PCR反应时,如果PCR的反应体系为20μl和50μl,则推荐相应地使用0.8μl和2μl反转录产物。
2.qPCR检测。
a.推荐使用碧云天生产的D7260 BeyoFast™ SYBR Green qPCR Mix (2X)D7262 BeyoFast™ SYBR Green qPCR Mix (2X, Low ROX)D7265 BeyoFast™ SYBR Green qPCR Mix (2X, High ROX)进行常规的荧光染料法qPCR检测,或者使用碧云天生产的D7271 BeyoFast™ Probe qPCR Mix (2X)D7272 BeyoFast™ Probe qPCR Mix (2X, Low ROX)D7273 BeyoFast™ Probe qPCR Mix (2X, High ROX)进行Taqman探针法qPCR检测。
b.qPCR的具体条件,请参考qPCR试剂盒的相关说明。
3.引物延伸、探针标记等其它用途请自行参考M-MLV反转录酶的相关文献资料进行。
常见问题:
1.总RNA反转录产物电泳观察不到。
a.反转录产物由于是从模板反转录而获得,而模板的量本身比较低,反转录的量通常还要少于模板量,并且总RNA的反转录产物大小很不均匀,因此通常总RNA的反转录产物直接电泳观察是观察不到的。
2.反转录产物通过PCR扩增没有特异性条带。
a.PCR扩增没有获得特异性条带时建议先使用actin、GAPDH等作为内参进行PCR扩增,看是否可以成功扩增。如果可以成功,则说明PCR扩增体系没有问题,此时通常是目的基因的引物设计欠佳,当然也有可能是反转录产物质量欠佳。如果内参不能被很好地扩增,则有可能PCR体系存在问题或反转录产物质量欠佳。
b.模板RNA发生了降解。哺乳动物细胞或组织的总RNA琼脂糖电泳后应该可以看到清晰的18S和28S rRNA条带,并且28S rRNA和18S rRNA的亮度比例应该大于等于2.0。如果比例小于2.0,则提示总RNA发生了显著的降解,最好能重新制备总RNA样品。避免RNA降解的主要方法是,严格进行RNA的相关操作,包括带洁净手套、戴一次性口罩、在洁净环境中抽提或制备RNA,以尽量避免RNase污染。
c.模板RNA的纯度偏低。在提取纯化RNA的过程中,残留在溶液中的一些成分如苯酚、SDS、EDTA、胍盐、磷酸、焦磷酸、多胺、亚精胺等会抑制反转录酶活性。对RNA样品进行柱纯化,或者进行沉淀、洗涤和再溶解,通常可以有效去除残留的污染物。通常选择使用碧云天的BeyoZol或Trizol抽提获得的总RNA完全可以满足反转录反应的需要。
d.反转录反应的模板量不足。在抽提获得总RNA后,在进行一些精细的定量检测时通常会进行DNase I消化,以充分去除可能的残留的DNA的干扰。DNase I进行热失活时,需要加入EDTA至终浓度为2.5mM,否则RNA在没有螯合剂的情况下,在加热过程中容易被水解,从而导致模板量不足。此外,扩增特定基因时,需要先查询该基因的组织分布特点,利用其高表达的组织进行目的基因的反转录和克隆。用该基因丰度极低的组织或细胞样品进行反转录和PCR扩增,通常会由于模板量过少而PCR扩增失败。
e.没有使用适当的反转录引物。对于细菌RNA和不含poly(A)尾巴的RNA,要用random hexamer引物代替Oligo(dT)18引物。使用基因特异性反转录引物时,需要确保基因特异性引物设计合理正确。
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