pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag (RaPID质粒)
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产品编号 D3039-1μg
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1μg 100μg
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pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag (RaPID质粒)是碧云天自行研发生产的一种用于在哺乳动物细胞中融合表达λN肽段、核外运信号和生物素连接酶(miniTurbo)的以用于生物素标记与RNA诱饵片段相互作用的目的蛋白的质粒。RaPID (RNA-Protein Interaction Detection)是在活细胞内(in Vivo)以RNA为中心(RNA-centric),利用生物素连接酶对与RNA诱饵片段相互作用的蛋白质进行生物素标记,后续通过Streptavidin磁珠或凝胶从细胞裂解液中分离纯化生物素标记蛋白,并通过质谱(Mass spectrometry, MS)或Western鉴定RNA-蛋白质间相互作用的技术(图1)。RaPID在筛选和鉴定活细胞内非编码RNA序列(Noncoding RNA sequence):包括长链非编码RNA (Long noncoding RNA, lncRNA)、小核仁RNA (Small nucleolar RNA, snoRNA)和非翻译mRNA区域(Untranslated mRNA region),与RNA结合蛋白(RNA-binding protein, RBP)相互作用和探索相关功能方面发挥着至关重要的作用[1-3]。

图1. 碧云天RaPID (RNA-Protein Interaction Detection)生物素标记质粒的工作原理图。

RaPID具有如下优点:①活细胞内标记:适合空间和时间上对细胞内RNA-蛋白质间的相互作用动态过程的研究,如亚细胞定位、翻译后修饰或蛋白质浓度变化导致的影响,还可以提供动力学数据。②不需要交联:RaPID无需交联,传统的甲醛或紫外光照射交联不仅对细胞影响较大,而且交联效率较低。③敏感性高:RaPID可以有效识别RNA与蛋白之间微弱、短暂的相互作用。④所需细胞数目少:相比于常见的ChIRP (Chromatin Isolation by RNA Purification)技术需要1-5×108个细胞,RaPID只需要2-5×106个细胞。⑤适用RNA种类多:对RNA结构没有限定,具有二级结构和无特定结构均可,而且可以研究<50nt的小RNA片段。⑥反应速度快:加入生物素后,miniTurbo最快10分钟就可以完成对RNA结合蛋白的生物素标记。

RaPID包括2个质粒:RaPID生物素连接酶载体(pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag) (本产品),即RaPID protein;和RNA诱饵载体(pCMV-EGFP-BoxB-RNAmotif-BoxB) (D3040),即RNA component。

pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag (RaPID质粒)可在哺乳动物细胞中融合表达λN肽段、核外运信号和生物素连接酶(miniTurbo):λN肽段(MNARTRRRERRAEKQAQWKAAN, 22aa)能够将miniTurbo定位结合到RNA诱饵片段旁的BoxB茎环结构上;核外运信号(Nuclear Export Signal, NES) 辅助miniTurbo进入细胞质中;miniTurbo是利用酵母表面展示(Yeast surface display)基于E.coli生物素连接酶(BirA)人工改造获得的新型生物素连接酶,在ATP存在的条件下,miniTurbo可以高效活化生物素(D-Biotin)形成生物素酰-5'腺苷酸(Biotinoyl-5'-AMP),对与其邻近的(~10nm)任意暴露在外的蛋白赖氨酸残基进行生物素标记,从而对与RNA诱饵片段相互作用的蛋白质进行生物素标记。

pCMV-EGFP-BoxB-RNAmotif-BoxB (D3040)是碧云天自行研发生产的一种用于在哺乳动物细胞中表达RNA诱饵片段的载体,RNA诱饵片段被2个λ噬菌体(Bacteriophage lambda)的BoxB RNA茎环结构夹在中间,其中BoxB茎环结构与λN肽段具有极高的亲和力。

本质粒含有CMV启动子,可以高效启动λN-NES-miniTurbo-Flag在细胞中的表达;表达的融合蛋白带有3X Flag标签便于检测;带有氨苄青霉素(Ampicillin)抗性和新霉素(Neomycin)抗性,可利用其氨苄青霉素抗性转化大肠杆菌后筛选阳性菌;转染哺乳动物细胞后,可使用G418 (ST081)筛选稳定表达目的蛋白的细胞株,G418和新霉素效果一致,但G418的细胞毒性更低。

pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag质粒的主要信息如下:

Feature Nucleotide Position
CMV promoter 235-818
λN peptide 907-972
linker 973-1005
NES,Nuclear Export Signal 1015-1041
miniTurbo 1048-1818
3X Flag Tag 1825-1890
BGH poly(A) signal 1925-2149
f1 ori 2195-2623
SV40 promoter 2637-2966
Neomycin resistance gene 3033-3827
SV40 poly(A) signal 4001-4122
lac operator 4195-4211
CAP binding site 4264-4285
ori 4573-5158
Ampicillin resistance gene 5329-6189
Ampicillin promoter 6190-6294

pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag质粒(6325bp)的图谱如下:

pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag表达基因的详细图谱见说明书:https://www.beyotime.com/Manual/D3039 pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag (RaPID质粒).pdf

pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag中没有的酶切位点包括:

AarI AbsI AccIII Acc65I AcvI AfeI AflII
AgeI AjuI AleI Aor13HI Aor51HI AscI AsiGI
AsiSI Asp718I AxyI BaeI BarI BbrPI BfrI
BlpI BoxI Bpu1102I Bse21I BseAI BsgI BshTI
BsiWI BsmBI Bsp13I Bsp1407I Bsp1720I BspEI BspTI
BsrGI Bst98I BstAFI BstAUI BstEII BstHPI BstPI
BstPAI Bsu36I CelII Cfr42I CspAI Eco32I Eco47III
Eco72I Eco81I Eco91I EcoO65I EcoRI EcoRV Esp3I
FseI FspAI HindIII HpaI I-CeuI I-PpoI I-SceI
KflI KpnI Kpn2I KspI KspAI MauBI MreI
MroI MspCI OliI PacI PaeR7I PalAI PaqCI
Pfl23II PI-PspI PI-SceI PinAI PmaCI PmlI PpuMI
PshAI Psp5II PspCI PspEI PspLI PspPPI PspXI
PsrI RgaI RigI SacII SanDI SfaAI SfiI
Sfr274I Sfr303I SgfI SgrBI SgsI SlaI SmiI
SrfI SspBI SstII SwaI TstI Vha464I XbaI
XhoI

pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag中的单酶切位点包括:

AhdI AvaI AvrII BamHI BbsI BbvCI BglII
BmeT110I BmgBI BmtI BsmI BsoBI BspDI BssHII
BstBI BstXI BstZ17I ClaI CsiI DraIII Eco53kI
EcoNI MfeI MluI NdeI NheI NotI NruI
PasI PciI PflFI PflMI PfoI PmeI PvuI
RsrII SacI ScaI SexAI SgrAI SgrDI SmaI
SnaBI SpeI SspI TspMI Tth111I XmaI

pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag质粒中推荐使用的测序引物序列如下:

CMV-F (769-789): 5'-CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG-3'

BGH-R (1936-1919): 5'-TAGAAGGCACAGTCGAGG-3'

pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag的全序列信息:D3039 pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag (RaPID质粒).txt

包装清单:
产品编号 产品名称 包装
D3039-1µg pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag 1µg
D3039-100µg pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag 100µg
说明书 1份
保存条件:

-20℃保存。

注意事项:

本质粒未经碧云天书面许可不得用于任何商业用途,也不得移交给订货人所在实验室外的任何个人或单位。

本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。

为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

使用说明:
1.首次使用1µg包装的本产品时,请先取少量本质粒转化大肠杆菌,进行质粒小量、中量或大量抽提后再用于后续用途。抽提获得的质粒可以通过酶切电泳进行鉴定,或通过测序进行鉴定。
2.100µg包装的本产品质粒浓度为0.25µg/µl,共400µl。可以直接用于酶切或者转染细胞。
3.构建RNA诱饵载体。
通过BsmBI限制性内切酶对RNA诱饵载体(pCMV-EGFP-BoxB-RNAmotif-BoxB) (D3040)进行酶切,将RNA诱饵片段插入2个BoxB茎环结构夹之间。具体使用方法参见(pCMV-EGFP-BoxB-RNAmotif-BoxB) (D3040)使用说明。
4.RNA诱饵载体与RaPID生物素连接酶载体质粒共转染细胞。
a.在转染前一天将适量细胞(具体的细胞数量根据细胞类型、大小和细胞生长速度等确定)接种到6孔板内进行培养,使第二天细胞密度能达到约70-80%。
b.使用合适的转染试剂例如Lipo8000™或Lipo6000™将RaPID生物素连接酶载体(pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag) (D3039) 分别与插入有RNA诱饵片段的载体、阴性对照质粒(pCMV-EGFP-BoxB-RNAmotif-BoxB) (D3040)和阳性对照质粒(pCMV-EGFP-BoxB-EDEN15-BoxB) (D3042)共转染到细胞中。
注:RaPID生物素连接酶载体与RNA诱饵载体的使用比例,建议按照1:5-10进行摸索。
c.在转染12-48小时后,吸尽培养液,更换为含有0.05-500μM的生物素的完全培养液(图2, 4-6孔)或不含有生物素的完全培养液(图2, 1-3孔),继续培养10分钟-18小时。
注:加入生物素的终浓度和后培养时间可根据实验目的进行调整。一般情况下,miniTurboID在生物素终浓度为500μM的条件下,10-60分钟就可以有效标记相互作用的蛋白,但还是建议在0.05-500μM和10分钟-18小时范围内设置梯度,以寻找最适合的生物素使用浓度和标记时间。
d.可通过荧光显微镜观察细胞表达EGFP绿色荧光的情况,以确定诱饵RNA诱饵片段的表达情况。
e.去除培养液,用预冷的PBS洗涤细胞2次,去除PBS,尽量确保没有液体残留。

图2. 碧云天pCMV-λN-NES-miniTurbo-Flag (RaPID质粒)推荐的使用流程图。

5.细胞裂解。
a.选择合适的裂解液,用于制备细胞裂解液。推荐使用Western及IP细胞裂解液用于细胞(P0013)。如有必要,也可以使用RIPA裂解液(P0013B/P0013C/P0013D)用于样品的制备。如果使用自行配制的裂解液,需要确保裂解液的pH为6-8。
b.具体的细胞裂解液的制备步骤请参考相应裂解液的使用说明。制备好的裂解液上清置于冰上或4℃存放,随后即可用于免疫沉淀。新鲜制备好的样品,建议尽量当天完成免疫沉淀等后续操作,但如果样品不能当天使用,也可以适当分装后-80℃冻存。
6.免疫印迹法(Immunoblot)。
免疫印迹法检测λN-NES-miniTurbo-Flag蛋白的表达和被生物素标记的RNA结合蛋白。具体实验操作方法可参照碧云天网站的Western实验步骤:https://www.beyotime.com/support/western.htm
7.诱饵RNA的qPCR定量(选做)。
在RNA诱饵载体中BoxB-RNAmotif-BoxB在EGFP的3' UTR端,因此可以通过如下引物对诱饵RNA的拷贝数进行定量。
EGFP-F: 5'-GAAGCAGCACGACTTCTTCAA-3'
EGFP-R: 5'-AAGTCGATGCCCTTCAGCTC-3'
8.免疫沉淀(Pull Down)生物素标记蛋白。
推荐使用BeyoMag™ Streptavidin Magnetic Beads (链霉亲和素磁珠) (P2151),具体的免疫沉淀步骤请参考链霉亲和素磁珠的使用说明。
9.质谱(Mass Spectrometry)鉴定。
样品SDS-PAGE电泳后对凝胶进行考染或银染,切割感兴趣的目的条带进行质谱检测;也可以通过二维电泳后寻找差异点进行质谱分析;或者直接进行基于质谱的蛋白质组分析。
参考文献:
1.Ramanathan M, Majzoub K, Rao DS, Neela PH, Zarnegar BJ, et al. Nat Methods. 2018. 15(3):207-212.
2.Ramanathan M, Porter DF, Khavari PA. Nat Methods. 2019. 16(3):225-234.
3.Branon TC, Bosch JA, Sanchez AD, Udeshi ND, Svinkina T, et al. Nat Biotechnol. 2018. 36(9):880-887.
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