石蜡包埋组织基因组DNA抽提试剂盒(离心柱式)
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产品编号 D0064S
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¥ 378.00
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50次
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碧云天研发生产的石蜡包埋组织基因组DNA抽提试剂盒(离心柱式) (Paraffin-embedded Tissue Genomic DNA Purification Spin Kit),也称石蜡包埋组织基因组DNA提取试剂盒、包埋组织DNA抽提试剂盒、FFPE组织基因组DNA抽提试剂盒等,是一种采用环保脱蜡方式去除石蜡后抽提DNA的试剂盒。抽提获得的DNA可以应用于PCR、qPCR或基因组学研究等下游实验。

福尔马林固定石蜡包埋(Formalin fixation and paraffin embedding, FFPE),常应用于癌症等疾病研究中保存离体组织的形态学和组织学结构,以便于运输和储存,是病理样品长期保存的主要方法之一[1]。组织样品经福尔马林固定时,组织内细胞中的核酸和蛋白质等分子间随机交联,核酸出现片段化,因此难以获得高质量核酸。本试剂盒采用环保脱蜡法去除石蜡,以特殊的裂解条件释放FFPE组织样本中的DNA分子,最大程度地降低了福尔马林固定时组织内细胞中DNA与其它分子交联的不利影响,经本试剂盒抽提获得的DNA纯度高、完整性好、质量稳定。

本试剂盒抽提DNA的实验流程如图1所示。首先使用环保的脱蜡剂和蛋白酶K将FFPE样品脱蜡、消化,随后加入适合DNA结合到纯化柱上的缓冲液,然后加入到纯化柱内。通过高速离心,使DNA在穿过纯化柱的瞬间,结合到纯化柱上,随后通过三次洗涤去除各种杂质,最后通过洗脱液把DNA洗脱下来。

图1.碧云天石蜡包埋组织基因组DNA抽提试剂盒(离心柱式) (D0064)的实验流程图。

本试剂盒抽提获得的石蜡包埋组织样品基因组DNA纯度高。本试剂盒提供的纯化柱对于DNA的最大容量约为30μg,抽提获得的DNA A260/A280的范围通常在1.6-1.9之间。本试剂盒与常见的T品牌同类产品的抽提效果对比图参见图2。

图2.碧云天石蜡包埋组织基因组DNA抽提试剂盒(离心柱式) (D0064)与T品牌同类产品(Competitor T)的DNA抽提效果对比图。样品为小鼠肾脏和肝脏组织石蜡切片,样品用量为5片10μm厚切片。抽提后洗脱体积均为50μl,取10μl的洗脱样品与2μl BeyoRed DNA上样缓冲液(6X) (D0072)混合均匀后,在1%琼脂糖凝胶中电泳30分钟后拍照。如图所示,本试剂盒用于抽提小鼠肾脏、肝脏FFPE样品的DNA时,抽提得到的DNA的量与T品牌的同款试剂盒基本一致或略好。注:抽提得到的基因组DNA经RNase A处理。实际结果会因样品、实验条件、检测仪器等的不同而存在差异,图中数据仅供参考。

本试剂盒使用安全、高效。本试剂盒通过特殊的柱纯化介质进行DNA分离纯化,能有效避免常规方法抽提DNA时使用的酚、氯仿等有毒有害有机试剂。

本试剂盒操作快速、便捷。本试剂盒采用柱纯化,无需繁琐的DNA沉淀步骤,纯化DNA操作过程仅需约15分钟即可完成。和国外同类柱纯化产品相比,所需操作步骤和操作时间基本一致。碧云天同时提供更加便捷的BeyoMag™石蜡包埋组织基因组DNA抽提试剂盒(磁珠法) (D0089)。

本试剂盒的标准操作步骤抽提得到的总DNA含有少量RNA,但如果按照可选步骤加入RNase A,就可以获得不含RNA的高纯度总DNA。

本试剂盒小包装可用于50个样品的总DNA抽提。

包装清单:
产品编号 产品名称 包装
D0064S-1 脱蜡剂 50ml
D0064S-2 样品裂解液A 10ml
D0064S-3 样品裂解液B 11ml
D0064S-4 洗涤液I (首次使用前加17ml无水乙醇) 13ml (+17ml)
D0064S-5 洗涤液II (首次使用前加39ml无水乙醇) 26ml (+39ml)
D0064S-6 洗脱液 11ml
D0064S-7 蛋白酶K 1.1ml
D0064S-8 DNA纯化柱及废液收集管 50套
说明书 1份
保存条件:

蛋白酶K -20ºC保存,其余均室温保存,一年有效。蛋白酶K室温(15-25ºC)存放一周,活力无明显下降。

注意事项:

如果希望获得更高质量的DNA,宜尽量使用新鲜固定和包埋的组织样品。拿到组织样品后尽快在4-10%福尔马林中固定,固定时间最好在8-24小时之间或更短时间,长时间固定会使DNA断裂更为严重。

样品包埋前应确保彻底脱水,残留的甲醛可能抑制蛋白酶K的消化等相关实验步骤。

本试剂盒抽提DNA依赖于样品类型、储存时间以及固定条件。样品固定时间和保存时间过长(>1年)易破坏DNA完整性,无法抽提出长片段。

如需制备不含RNA的高纯度总DNA,需自备RNase A,推荐使用碧云天的RNase A (100mg/ml, DNase free) (ST577)。

温度较低时样品裂解液A或样品裂解液B中可能会有沉淀产生,属正常现象。使用前必须检查一遍,如有沉淀,55ºC水浴孵育使沉淀溶解,混匀后使用。

第一次使用前小包装洗涤液I需添加17ml无水乙醇,洗涤液II需添加39ml无水乙醇,混匀,并在瓶上做好标记。

本试剂盒须将FFPE样品56ºC和90ºC孵育,推荐使用碧云天的BeyoBath™干式恒温金属浴(1.5/2ml×40) (E6662)。

使用本试剂盒须提前备好无水乙醇。

除特别说明外,每次Vortex应控制在5-10秒左右,推荐使用碧云天的BeyoVortex™调速式涡旋混匀仪(E6699)或BeyoVortex™基础型涡旋混匀仪(E6788)。

本试剂盒所有操作均在室温进行,操作时无需冰浴。所有离心也均在室温进行。

废液收集管在一次抽提中需多次使用,切勿中途丢弃。

本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。

为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

使用说明:
1.样品处理。
a.石蜡包埋组织蜡块:手术刀切或刮取约10-25mg的组织样品(尽量去除组织周围的石蜡块)。
较小的组织碎片会使裂解速度加快,裂解效率提高。
b.石蜡包埋组织切片:取5-8张的石蜡切片(5-10μm厚,表面积小于1×1cm2)。
如果样品表面暴露于空气中,尽量避免使用。
c.福尔马林固定组织:取10-25mg福尔马林固定液中的组织,用手术刀充分切碎后,置于1.5ml离心管中,加入500μl的PBS, pH7.4 (DNase, RNase & Protease free, Sterile) (ST478),Vortex震荡混匀,12,000×g离心1分钟后充分去除上清,再重复清洗2次,然后从步骤2b开始操作。
2.脱蜡和裂解。
a.将石蜡块样品或者石蜡切片置于1.5ml离心管中,加入600μl的脱蜡剂,剧烈Vortex 30秒,以充分脱蜡。
福尔马林固定液中的组织样品无需加脱蜡剂,直接转入步骤2b开始操作;如果石蜡样品过多,可以将脱蜡剂用量增加至1ml。
b.加入180μl样品裂解液A和20μl蛋白酶K,Vortex混匀,56ºC金属浴或水浴孵育1小时或直至样品完全裂解。
裂解过程中可多次从金属浴中取出离心管颠倒混匀以促进裂解。裂解的时间因组织不同而有所不同,通常可在1-3小时内完成。为方便起见,可以直接过夜裂解,过夜裂解对DNA抽提效果通常无负面影响。
c.将完全裂解的组织样品置于90ºC孵育1小时,之后短暂离心使盖子上的蒸发液体回到管中。
90ºC孵育对解开DNA与其它分子的交联至关重要,但是必须严格控制孵育的温度和时间,否则可能产生更多的DNA碎片,因此应先将金属浴或水浴加温至90ºC再放入样品进行孵育。
d.将离心后的离心管室温静止5分钟,用吸头缓慢穿过上层脱蜡剂,吸取下层的澄清液体(约180μl)至新的离心管中。
e.清除RNA(可选做)。如果希望获得不含RNA的高纯度DNA,加入2μl的RNase A (100mg/ml, DNase free) (ST577),Vortex混匀。室温放置2分钟后,进行下一步操作。
如果残余的少量RNA对后续下游实验没有干扰,可以不进行本步实验操作,直接进入步骤2f。
f.向上述新的离心管中加入200μl样品裂解液B,Vortex混匀;再加入200μl无水乙醇,Vortex混匀。
加入样品裂解液B后可能会产生白色沉淀,需立即Vortex混匀,但不会干扰后续实验;加入无水乙醇后也可能产生白色沉淀,必须Vortex充分混匀,后续步骤中必须把白色沉淀和溶液全部转移到纯化柱内。
3.纯化DNA。
a.将步骤2f中的混合溶液加入到DNA纯化柱内。≥6000×g (约≥8000rpm)离心1分钟。倒弃废液收集管内液体。
进行本步骤前需将纯化柱置于废液收集管上。倒弃废液后回收废液收集管。
注:必须将步骤2f中的溶液和白色沉淀全部转移到DNA纯化柱内,否则会严重影响抽提效果!
b.向纯化柱中加入500μl洗涤液I,≥6000×g (约≥8000rpm)离心1分钟。倒弃废液收集管内液体。
进行本步骤前需将纯化柱置于废液收集管上。倒弃废液后回收废液收集管。
c.向纯化柱中加入600μl洗涤液II,≥18,000×g (约≥12,000rpm)离心1分钟。倒弃废液收集管内液体。
进行本步骤前需将纯化柱置于废液收集管上。倒弃废液后回收废液收集管。
d.重复步骤3c一次。
e.再≥18,000×g (约≥12,000rpm)离心1分钟,以去除残留的乙醇。
不可把步骤3d的离心时间延长而省略本步骤,倒弃废液后再离心可以确保充分去除残留的乙醇。
f.将DNA纯化柱置于一洁净的1.5ml离心管上,加入30-100μl洗脱液。室温放置1-3分钟。≥18,000×g (约≥12,000rpm)离心1分钟。所得液体即为纯化得到的总DNA。
洗脱液需要直接加至纯化柱管内柱面中央,使液体被纯化柱吸收。如果有必要,可以使用去离子水。使用较小体积的洗脱液可以使获得的总DNA的浓度较高,但洗脱下来的DNA量相对较少。洗脱液的pH对洗脱效率有很大影响,使用去离子水洗脱时应保证其pH值在7.0-8.5之间。如果对于获得较多量的DNA非常重要,可以在第一次洗脱后,再用同体积洗脱液重复洗脱一次。第二次洗脱可增加DNA洗脱量,但会降低洗脱DNA的浓度。经65ºC预热过的洗脱液可增加DNA的洗脱量。
参考文献:
1.Lee H, Ryu HS, Park HC, et al. Int J Mol Sci. 2022. 23(21):12923.
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