碧云天研发生产的叶绿体分离试剂盒(差速离心法)，英文名Chloroplast Isolation Kit by Differential Centrifugation，是一种通过研磨、过滤和差速离心的方法，在1小时内从新鲜植物叶片中快速提取完整的并有生物活性的叶绿体的试剂盒。本试剂盒所获得的叶绿体结构高度完整，可用于光合作用电子链的电子传递和磷酸化、叶绿体蛋白的跨膜转运和组装以及体外叶绿体蛋白合成和定位等生物学功能研究，也可以作为起始材料用于叶绿体蛋白的提取以及叶绿体DNA和RNA的分离纯化等。

叶绿体(Chloroplast)是一些藻类(Algae)和高等植物所特有双层膜结构的、进行光合作用的细胞器，参与氨基酸合成、叶绿素合成和脂质生物合成等多种生物代谢过程[1]。高等植物中叶绿体呈透镜状(Lens-shaped)，直径约5-10μm，厚约1-3μm，单个叶肉细胞中通常含有约50-200个叶绿体，占细胞质体积的约40%。尽管绝大部分叶绿体存在于叶片中，但它们也存在于茎、种子和没有成熟的果实中[2, 3]。

本试剂盒采用差速离心(Differential Centrifugation)的方法，分离出完整的叶绿体。

本试剂盒适用范围广。本试剂盒广泛适用于新鲜的单子叶植物(绿萝、玉米、小麦等)和双子叶植物(拟南芥、烟草、菠菜、大豆、白菜等)等多种类型植物。本试剂盒用于绿萝叶绿体提取的效果请参考图1。

图1.碧云天叶绿体分离试剂盒(差速离心法) (C0566)提取绿萝叶绿体效果图。取0.2g新鲜的绿萝叶片剪碎后共计加入2ml叶绿体提取缓冲液I，在冰上用TissueMaster™一次性塑料研磨杵(E6606)进行研磨直至无大块叶片；将研磨液加入到BeyoGold™细胞过滤器进行过滤，然后200×g，4ºC离心10分钟，将上清液转移到新的离心管中，1,100×g，4ºC离心10分钟，去上清，沉淀含有叶绿体。加入40μl叶绿体保存液重悬叶绿体沉淀。取10μl叶绿体重悬液置于细胞培养皿中或载玻片上，静置数分钟，待叶绿体充分沉降后，光学显微镜下观察叶绿体的数量与形态。实际的叶绿体提取效果可能会因实验条件、检测仪器和条件的不同而存在差异，图片仅供参考。

本试剂盒使用便捷。本产品不需要特殊的破碎设备，可以在1小时内快速得到完整的、有生物活性的叶绿体。

本试剂盒提取叶绿体的产量高。使用本产品每1g叶片能得到约0.1-0.2mg完整的叶绿体。以绿萝为例，使用本产品每1g绿萝叶片能得到0.15mg左右完整的叶绿体。

以每次处理0.2g或1g叶片计算，本试剂盒小包装和中包装分别可进行10-50次和50-250次提取。试剂盒中提供的过滤器仅足够10和50次提取，不足部分推荐购买BeyoGold™细胞过滤器(70μm孔径, 独立纸塑包装, 无菌) (FSTR070)。

包装清单：

产品编号	产品名称	包装
C0566S-1	叶绿体提取缓冲液I	100ml
C0566S-2	叶绿体提取缓冲液II	15ml
C0566S-3	叶绿体保存液	5ml
C0566S-4	BeyoGold™细胞过滤器	10个
—	说明书	1份

产品编号	产品名称	包装
C0566M-1	叶绿体提取缓冲液I	500ml
C0566M-2	叶绿体提取缓冲液II	60ml
C0566M-3	叶绿体保存液	25ml
C0566M-4	BeyoGold™细胞过滤器	50个
—	说明书	1份

保存条件：

-20ºC保存，一年有效。BeyoGold™细胞过滤器室温保存。

注意事项：

自备丙酮、超纯水或去离子水或双蒸水、剪刀(FS001)、离心管(FTUB030)和TissueMaster™一次性塑料研磨杵(E6606)或玻璃匀浆器、研钵、匀浆机(E1648/E6600)等研磨设备。超纯水推荐选购BeyoPure™ Ultrapure Water (DNase/RNase-Free, Sterile) (ST876)。

叶绿体对温度高度敏感，因此分离叶绿体的所有步骤均需在冰上进行，所用溶液需冰浴处理，离心也需要使用4ºC离心机。

重悬时，如果使用常规吸头，必须要剪掉吸头顶端，使口径变大，轻柔吹打，避免剧烈吹打导致叶绿体破裂。

在实验操作的过程中要避免剧烈震荡或剧烈吹打，全程保持动作轻柔缓慢，防止叶绿体破裂。

提取得到的叶绿体非常容易失去活性，如果进行活性检测，宜尽快使用。

冻存的试剂须完全融化并混匀后使用。

如果需要更多的细胞过滤器，推荐购买BeyoGold™细胞过滤器(70μm孔径, 独立纸塑包装, 无菌) (FSTR070)。

本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

使用说明：
1.叶绿体提取缓冲液的准备。如果是-20ºC保存的叶绿体提取缓冲液I和叶绿体提取缓冲液II，解冻后冰浴备用。如果是4ºC保存的，取出后冰浴备用。
2.叶绿体的提取。
a.采集新鲜植物叶片，先用自来水洗净，再用蒸馏水冲洗，然后置于滤纸上去掉多余水分。
b.将约1g除去叶脉的叶片剪成1-3cm2大小的碎片，加入5ml预冷的叶绿体提取缓冲液I，用TissueMaster™一次性塑料研磨杵(E6606)、玻璃匀浆器、匀浆机或研钵在冰上进行研磨。
c.对于常规绿色叶片，当研磨后的液体呈现浓绿色时，吸出液体转移至新的预冷的15ml离心管中，再加入5ml预冷的叶绿体提取缓冲液I继续研磨，直至无大块叶片时将液体吸出，并将合并的共约10ml研磨后的液体用BeyoGold™细胞过滤器进行过滤。对于非常规绿色叶片的情况，可以参考绿色叶片的操作进行。
注1：在研磨过程中，为了避免叶绿体的破裂，尽量避免气泡产生，操作过程须轻柔。
注2：推荐每1g叶片共使用10ml叶绿体提取缓冲液I。如果叶片的用量有增减，相应的溶液可以按照比例进行调整。
注3：上述实验过程均须在冰上操作。
d.将过滤后的液体200×g，4ºC离心5-10分钟，将液体转移至新的预冷的15ml离心管，注意不要触及沉淀。
注1：离心时间越短，最终得到的叶绿体的纯度会略有下降，但可节约操作时间。可以根据实验需求，选择适当的离心时间。
e.1100×g，4ºC离心10-15分钟，小心弃去上清，沉淀含叶绿体，呈深绿色。加入200μl叶绿体保存液，轻轻吹打悬浮沉淀，悬液即为分离纯化获得的叶绿体。取10μl叶绿体重悬液置于细胞培养皿中或载玻片上，静置数分钟，待叶绿体沉降至同一水平面后，光学显微镜下观察叶绿体的数量与形态。可以根据沉淀量适当调整加入叶绿体保存液的体积。
注1：可以根据沉淀量适当调整加入叶绿体提取缓冲液II的体积，建议每1g叶片的沉淀加入不超过1.5ml叶绿体提取缓冲液II。
注2：吹打悬浮叶绿体沉淀的吸头要剪去尖端，使口径变大，吹打时要缓慢重悬，不能剧烈操作。
注3：离心时间可以在10-15分钟内适当调整，离心时间越长，得率越高，但离心10分钟也可以有较好的得率。
注4：若样品中有较高含量的淀粉，离心管底部会出现白色贴壁的淀粉沉淀。加入叶绿体提取缓冲液II后须注意轻柔吹打，尽量避免白色沉淀被重悬，仅重悬上方绿色叶绿体沉淀，并转移至新的1.5ml离心管中。尽量注意避光操作，缩短操作时间，并尽量确保在低温进行操作，能有效减少在操作过程中产生白色淀粉沉淀的几率。
f.(选做) 如果步骤2e离心时出现白色沉淀，可以考虑在获得叶绿体沉淀后，加入1.5ml叶绿体提取缓冲液II轻轻吹打悬浮沉淀， 2,500×g，4ºC离心15分钟。小心弃去上清，绿色沉淀即为叶绿体。每管沉淀中加入200μl叶绿体保存液，轻柔重悬。取10μl叶绿体重悬液置于细胞培养皿中或载玻片上，静置数分钟，待叶绿体沉降至同一水平面后，光学显微镜下观察叶绿体的数量与形态。可以根据沉淀量适当调整加入叶绿体保存液的体积。
注：若离心管底部出现白色贴壁沉淀即为淀粉，加入叶绿体保存液后轻柔吹打，尽量避免重悬到白色沉淀，仅重悬上方绿色叶绿体沉淀，并转移至新的1.5ml离心管中。
3.叶绿体的使用。从步骤2纯化获得叶绿体后续可以进行多种用途，包括提取叶绿体蛋白、DNA或RNA，用于叶绿体光合作用活性、电子传递链活性以及各种叶绿体复合体活性的研究等。
a.如果制备叶绿体蛋白样品，推荐使用植物Western及IP细胞裂解液(P0043)或植物RIPA细胞裂解液(强) (P0045)制备叶绿体裂解液。
b.如果制备叶绿体DNA样品，推荐使用基因组DNA小量抽提试剂盒(通用型，离心柱式) (D0063)。
c.如果制备叶绿体RNA样品，推荐使用Beyozol (总RNA抽提试剂) (R0011)或RNAeasy™动物RNA抽提试剂盒(离心柱式) (R0024/R0026/R0027)。
d.如果进行叶绿体的活性检测，取步骤2获得叶绿体悬浮液进行希尔反应检测，可以判断提取的叶绿体是否具有活性。
e.如果进行叶绿体中叶绿素a/b含量测定。取10μl叶绿体悬浮液到80%丙酮溶液中，进行叶绿素的萃取，测定萃取液在645nm和663nm吸光值，计算叶绿素a/b的含量。
4.叶绿素总量测定。通常叶绿体总量用单位重量叶片中叶绿素含量来表示，如mg叶绿素/g叶片。
a.配制80%丙酮：取超纯水、去离子水或双蒸水和丙酮溶液按照超纯水、去离子水或双蒸水:丙酮 = 1:4的比例进行配制。
b.取10μl叶绿体悬液加入到990μl 80%丙酮溶液中，混匀。
c.3,000×g，4ºC离心5分钟，取上清测定OD652吸光值。用10μl的叶绿体保存液和990μl 80%丙酮做空白对照。
d.根据以下公式计算叶绿素浓度。随后根据最初的叶片用量和相应的叶绿体悬液的体积，可以计算出单位重量叶片中叶绿素含量。
叶绿素浓度(mg/ml) = (OD652×100)/36
100：稀释倍数
36：extinction coefficient in ml/cm˙mg
常见问题：
1.叶绿体样品显微镜下拍照困难？
取叶绿体悬浮液滴加至细胞培养皿中或载玻片上，放置显微镜置物台上，观察到目标后，静置数分钟，使得叶绿体沉降至同一水平面后进行拍照。若显微镜观察发现有针状物，可以将叶绿体悬浮液静置放置数分钟，使得针状物沉积，然后吸取上层叶绿体悬浮液进行稀释、静置和观察。
参考文献：
1.Hameed A, Ahmed MZ, Hussain T, Aziz I, Ahmad N, et al. Cells. 2021. 7:10(8).
2.Cackett L, Luginbuehl LH, Schreier TB, Lopez-Juez E, Hibberd JM. New Phytol. 2022. 233(5):2000-2016.
3.Cocaliadis MF, Fernández-Muñoz R, Pons C, Orzaez D, Granell A. J Exp Bot. 2014. 65(16):4589-98.
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