Lipo6000™转染试剂
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产品编号 C0526-0.5ml
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¥ 328.00
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0.1ml 0.5ml 1.5ml 5×1.5ml
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Lipo6000™转染试剂(Lipo6000™ Transfection Reagent)是一种非常高效的新型转染试剂,达到了国际最主流转染试剂的转染效果。适用于把质粒、siRNA或其它形式的核酸包括DNA、RNA、寡核苷酸、以及核酸蛋白复合物或带负电荷的蛋白转染到真核细胞中,也可以用于活体动物的核酸转染以用于基因治疗。
Lipo6000™转染试剂对于常见的哺乳动物细胞具有非常高的转染效率、重复性好、操作简单、无明显的细胞毒性,并且对于贴壁细胞和悬浮细胞都适用。贴壁细胞转染试剂的比较和选择请参考:http://www.beyotime.com/support/lipo.htm
Lipo6000™转染试剂的使用方法和常用的Lipofectamine®2000 Reagent基本一致。并且经过对HEK293T、Hela、NIH3T3、HEK293FT、CHO等细胞的测试,转染效率也和Lipofectamine® 2000 Reagent相当甚至略高。
Lipo6000™转染试剂不仅适用于质粒、siRNA等单一成分的细胞转染,也适合多个质粒或者质粒与siRNA等的组合转染。
Lipo6000™转染试剂转染过表达质粒后,通常24-48小时后达到较高的蛋白表达水平,并且很多情况下蛋白表达量在转染后48小时显著高于转染后24小时;转染siRNA通常3-5天后对于目的基因的下调水平会比较理想。
Lipo6000™转染试剂转染细胞时,基本不受细胞培养液中的血清和抗生素的影响,即可以在血清和抗生素存在的情况下进行细胞转染。但为了取得最佳的转染效果,推荐转染时使用不含抗生素的含血清的细胞培养液。
Lipo6000™转染试剂的转染效果可以通过转染表达EGFP等荧光蛋白的质粒进行快速鉴定。
Lipo6000™转染试剂与Lipofectamine® 2000 Reagent转染效果比较请参考图1-6。

图1. Lipo6000™转染试剂与Lipofectamine® 2000 Reagent转染效率的比较。仅转染试剂不同,其余条件一致。

图2. Lipo6000™转染试剂(A, B)与Lipofectamine® 2000 Reagent (C, D)用EGFP表达质粒转染HEK293T细胞后的实拍效果图。

图3. Lipo6000™转染试剂(A, B)与Lipofectamine® 2000 Reagent (C, D)用EGFP表达质粒转染Hela细胞后的实拍效果图。

图4. Lipo6000™转染试剂(A, B)与Lipofectamine® 2000 Reagent (C, D)用EGFP表达质粒转染NIH3T3细胞后的实拍效果图。

图5. Lipo6000™转染试剂(A, B)与Lipofectamine® 2000 Reagent (C, D)用EGFP表达质粒转染HEK293FT细胞后的实拍效果图。

图6. Lipo6000™转染试剂(A, B)与Lipofectamine® 2000 Reagent (C, D)用EGFP表达质粒转染CHO细胞后的实拍效果图。

对于六孔板,一个包装的C0526-0.5ml、C0526-1.5ml和C0526-7.5ml转染试剂大约可以分别转染100个、300个和1500个孔;对于24孔板,一个包装的C0526-0.5ml、C0526-1.5ml和C0526-7.5ml转染试剂大约可以分别转染500个、1500个和7500个孔。
包装清单:

产品编号 产品名称 包装
C0526-0.5ml Lipo6000™转染试剂 0.5ml
C0526-1.5ml Lipo6000™转染试剂 1.5ml
C0526-7.5ml Lipo6000™转染试剂 5×1.5ml
说明书 1份

保存条件:
4℃保存。长期不使用可以-20℃保存。
注意事项:
使用高纯度的DNA或RNA有助于获得较高的转染效率。对于质粒,可以使用碧云天生产的质粒大量抽提试剂盒(D0026)进行抽提,以保证可以获得较高的转染效率。
转染前细胞必须处于良好的生长状态。
需自备不含抗生素的无血清培养液或Opti-MEM®培养液或普通的DMEM培养液。
Lipo6000™转染试剂不能vortex或离心,宜缓慢晃动混匀。
Lipo6000™转染试剂使用后请立即盖好盖子,避免长时间暴露在空气中,影响转染效率。
本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

使用说明:
1. DNA转染:
a. 细胞培养(以六孔板为例,其它培养板或培养皿可参考六孔板):在转染前一天(18-24小时)按照每孔约20-70万细胞(具体的细胞数量据细胞类型、大小和细胞生长速度等而定)接种到六孔板内进行培养,使第二天细胞密度能达到约70-90%。
b. 在进行下述转染步骤前,把培养有细胞的六孔板每孔换成2ml新鲜培养液(含有血清,不含抗生素)。可以使用含有血清并含有抗生素的新鲜培养液,但抗生素的存在对于有些细胞容易导致转染后出现一定的细胞毒性。
c. 参考下表,对于待转染的六孔板中每一个孔的细胞,取两个洁净无菌离心管,分别加入125μl不含抗生素和血清的DMEM培养液(高糖DMEM或低糖DMEM均可)或Opti-MEM® Medium,然后于其中一管加入2.5μg质粒DNA,并用枪轻轻吹打混匀;另一管加入5μl Lipo6000™转染试剂,用枪轻轻吹打混匀,请特别注意不可Vortex或离心。室温静置5分钟后(通常最长不宜超过25分钟),将含有DNA的培养液用枪轻轻加入含Lipo6000™转染试剂的培养液中,轻轻颠倒离心管或者用枪轻轻吹打混匀,室温静置5分钟(室温存放6小时内稳定)。

96-well 48-well 24-well 12-well 6-well 6cm dish 10cm dish
Lipo6000™转染试剂 0.2μl 0.5μl 1μl 2μl 5μl 10μl 30μl
无血清培养液或Opti- MEM® Medium 5μl 12.5μl 25μl 50μl 125μl 250μl 750μl
DNA 100ng 250ng 500ng 1μg 2.5μg 5μg 15μg
无血清培养液或Opti- MEM® Medium 5μl 12.5μl 25μl 50μl 125μl 250μl 750μl
稀释好的Lipo6000™转染试剂和DNA分别室温静止放置5分钟,随后两者混合并混匀再室温静止放置5分钟
每孔加入的混合物的量 10μl 25μl 50μl 100μl 250μl 500μl 1500μl
按照上述用量每孔均匀滴加Lipo6000™转染试剂和DNA的混合物,4-6小时后更换培养液或直接继续培养

注1:对于六孔板中一个孔的细胞,Lipo6000™转染试剂的用量可以在3-12.5μl范围内进行适当调节,DNA用量建议固定在2.5μg,但也可以在1-4μg的范围内进行适当调节。通常质粒用量(μg)和Lipo6000™(μl)的用量比例为1:2或1:3比较常用,如有必要可以在1:0.5-1:5的范围内优化转染效果,上表推荐的比例为1:2,此时Lipo6000™的用量相对较少,既经济又高效。最佳的转染条件,因不同的细胞类型和培养条件而有所不同,可以在上述推荐范围内自行优化转染条件。
注2:质粒的浓度宜控制在0.5-5μg/μl范围内。
注3:对于多个孔转染相同数量相同质粒的情况可以把每个孔所需的Lipo6000™转染试剂和DNA混合物分别配制,然后一起混合在同一个离心管内,后续混匀并孵育5分钟后,可以按照推荐用量滴加到细胞培养器皿内。
注4:对于其它培养板或培养器皿,各种试剂的用量可以按照细胞培养器皿的培养面积按比例进行换算。如果转染寡核苷酸或RNA等可以参考转染DNA的条件进行。
d. 无论是贴壁细胞还是悬浮细胞,按照六孔板每孔250μl Lipo6000™转染试剂-DNA混合物的用量,均匀滴加到整个孔内,随后轻轻混匀。
e. 为达到最高的转染效率,细胞在转染后培养4-6小时后宜更换为新鲜的完全培养液(对于Hela细胞,推荐在转染4小时后更换培养液,对于NIH3T3、CHO、HEK293T和HEK293FT细胞,推荐在转染6小时后更换培养液)。
f. 继续培养约24-48小时后,即可用适当方式检测转染效果,例如荧光检测、Western、ELISA、报告基因等,或加入适当的筛选药物如G418等进行稳定细胞株的筛选。
2. siRNA转染:
a. 细胞培养(以六孔板为例,其它培养板或培养皿可参考六孔板):在转染前一天(18-24小时)按照每孔约20-70万细胞(具体的细胞数量据细胞类型、大小和细胞生长速度等而定)接种到六孔板内进行培养,使第二天细胞密度能达到约30-50%。
b. 在进行下述转染步骤前,把培养有细胞的六孔板每孔换成2ml新鲜培养液(含有血清,不含抗生素)。可以使用含有血清并含有抗生素的新鲜培养液,但抗生素的存在对于有些细胞容易导致转染后出现一定的细胞毒性。
c. 参考下表,对于待转染的六孔板中每一个孔的细胞,取两个洁净无菌离心管,分别加入125μl不含抗生素和血清的DMEM培养液(高糖DMEM或低糖DMEM均可)或Opti-MEM® Medium,然后于其中一管加入100pmol siRNA,并用枪轻轻吹打混匀;而另一管加入5μl Lipo6000™转染试剂,用枪轻轻吹打混匀,请特别注意不可Vortex或离心。室温静置5分钟后(通常最长不宜超过25分钟),将含有siRNA的培养液用枪轻轻加入含Lipo6000™转染试剂的培养液中,轻轻颠倒离心管或者用枪轻轻吹打混匀,室温静置5分钟(室温存放6小时内稳定)。

96-well 48-well 24-well 12-well 6-well 6cm dish 10cm dish
Lipo6000™转染试剂 0.2μl 0.5μl 1μl 2μl 5μl 10μl 30μl
无血清培养液或Opti- MEM® Medium 5μl 12.5μl 25μl 50μl 125μl 250μl 750μl
siRNA 4pmol 10pmol 20pmol 40pmol 100pmol 200pmol 600pmol
无血清培养液或Opti- MEM® Medium 5μl 12.5μl 25μl 50μl 125μl 250μl 750μl
稀释好的Lipo6000™转染试剂和siRNA分别室温静止放置5分钟,随后两者混合并混匀再室温静止放置5分钟
每孔加入的混合物的量 10μl 25μl 50μl 100μl 250μl 500μl 1500μl
按照上述用量每孔均匀滴加Lipo6000™转染试剂和siRNA的混合物,4-6小时后更换培养液或直接继续培养

注1:对于六孔板中一个孔的细胞,Lipo6000™转染试剂的用量可以在2.5-7.5μl范围内进行适当调节,siRNA用量可以在50-250pmol的范围内进行适当调节。通常siRNA用量(pmol)和Lipo6000™(μl)的用量比例为20:1,如有必要可以在10:1-40:1的范围内优化转染效果,上表推荐的比例为20:1,此时Lipo6000™的用量相对较少,既经济又高效。最佳的转染条件,因不同的细胞类型和培养条件而有所不同,可以在上述推荐范围内自行优化转染条件。
注2:siRNA的推荐浓度为20μM,常用的浓度范围为10-50μM。
注3:对于多个孔转染相同数量相同质粒的情况可以把每个孔所需的Lipo6000™转染试剂和siRNA混合物分别配制,然后一起混合在同一个离心管内,后续混匀并孵育5分钟后,可以按照推荐用量滴加到细胞培养器皿内。
注4:对于其它培养板或培养器皿,各种试剂的用量可以按照细胞培养器皿的培养面积按比例进行换算。如果转染寡核苷酸或RNA等可以参考转染DNA的条件进行。
d. 无论是贴壁细胞还是悬浮细胞,按照六孔板每孔250μl Lipo6000™转染试剂-siRNA混合物的用量,均匀滴加到整个孔内,随后轻轻混匀。
e. 为达到最高的转染效率,细胞在转染后培养4-6小时后宜更换为新鲜的完全培养液(对于Hela细胞,推荐在转染4小时后更换培养液,对于NIH3T3、CHO、HEK293T和HEK293FT细胞,推荐在转染6小时后更换培养液)。
f. 继续培养3-5天后,即可用适当方式检测siRNA对于靶基因的下调效果,例如qPCR、Western、ELISA、报告基因等。

常见问题:
1. 转染效率低:
a. 优化质粒与Lipo6000™转染试剂比例,对于难转染的细胞,可适当加大质粒用量。
b. 应用高纯度、无菌、无污染物的质粒进行转染,DNA纯度方面A260/A280比值要接近1.8,通常宜控制在1.8-1.9范围内,偏低则有可能有蛋白污染,偏高则有可能有RNA污染。可以使用碧云天生产的质粒大量抽提试剂盒(D0026) 进行抽提,以保证可以获得较高的转染效率。
c. 贴壁细胞转染时状态良好,细胞密度达30-50%时才可进行转染,过稀可能影响转染效率,细胞密度达到50-90%时通常不会影响转染效率。不同细胞的最佳转染密度需要自行摸索。悬浮细胞 宜在对数生长期进行转染。
d. 需使用无抗生素和无血清培养液配制Lipo6000™转染试剂和质粒或siRNA等的混合物。
e. 转染后培养时间不足,而被误以为转染效率偏低。不同细胞转染后至显著表达所需要培养的时间通常为24-48小时。
f. 检查细胞是否有支原体感染,支原体感染会影响细胞增殖,并很可能影响转染效率。
g. 如果没有检测到目的蛋白表达,应该仔细核对转染质粒的测序结果,确保测序结果和读码框完全正确。
h. 如果靶基因的敲减(knockdown)效果欠佳,应该考虑尝试设计不同的siRNA。
2. 细胞毒性较大:
a. 缩短转染时间,在转染后较短时间内更换新鲜的细胞培养液。
b. 减少质粒用量,按照比例减少Lipo6000™转染试剂。
c. 检查是否转染时细胞密度太低。
附录:
常用多孔板和培养皿的尺寸、培养面积、细胞培养量和推荐的培养体积等相关数据表:

Multiple Well Plates or Dishes Single Well Only for Plates
Diameter (Bottom, mm)* Growth Area (cm2)* Average Cell Yield Total Well Volume (ml) Working Volume (ml) Recommended Volume (ml)
6 well 34.8 9.5 9.5 × 105 16.8 1.9-2.9 2
12 well 22.1 3.8 3.8 × 105 6.9 0.76-1.14 1
24 well 15.6 1.9 1.9 × 105 3.4 0.38-0.57 0.5
48 well 11.0 0.95 9.5 × 104 1.6 0.19-0.285 0.25
96 well 6.4 0.32 3.2 × 104 0.36 0.10-0.20 0.1
384 well 2.7 0.056 5.6 × 103 0.112 0.025-0.050 0.030
1536 well 1.63 × 1.63** 0.025 2.5 × 103 0.0125 0.005-0.010 0.010
3.5 cm dish 34 9 9.0 × 105 NA 1.8-2.7 2
6 cm dish 52 21 2.1 × 106 NA 4.2-6.3 5
10 cm dish 8.4 55 5.5 × 106 NA 11-16.5 12
15cm dish 14 152 1.5 × 107 NA 30.4-45.6 35
24.5cm dish 22.4 × 22.4** 500 5.0 × 107 NA 100-150 120

  *Diameter and growth area may vary depending on the manufacturer, and the listed sizes are from Corning.
  **These wells or dishes are square.

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C0526-1.5ml Lipo6000™转染试剂 1.5ml
C0526-7.5ml Lipo6000™转染试剂 5×1.5ml
C0533-0.5ml Lipo8000™转染试剂 0.5ml
C0533-1.5ml Lipo8000™转染试剂 1.5ml
C0533-7.5ml Lipo8000™转染试剂 5×1.5ml
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C0551-1.5ml LipoInsect™转染试剂 1.5ml
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1. Wenxi Zhou, Yu Zhou, Xinli Chen, Tingting Ning, Hongyi Chen, Qin Guo, Yiwen Zhang, Peixin Liu, Yujie Zhang, Chao Li, Yongchao Chu, Tao Sun, Chen Jiang
Biomaterials. doi: 10.1016/j.biomaterials.2020.120546. (IF 10.317)
2. Qin Jiang, Dong-Yuan Su, Zhen-Zhen Wang, Chang Liu, Ya-Nan Sun, Hong Cheng, Xiu-Miao Li, Biao Yan
Theranostics. doi: 10.7150/thno.51550. (IF 8.579)
3. Meng Zhao, Yizhuo Wang, Ling Li, Shuyun Liu, Chengshi Wang, Yujia Yuan, Guang Yang, Younan Chen, Jingqiu Cheng, Yanrong Lu, Jingping Liu
Theranostics. doi: 10.7150/thno.50905. (IF 8.579)
4. Bin Han, Qiaohong Wei, Fan Wu, Han Hu, Chuan Ma, Lifeng Meng, Xufeng Zhang, Mao Feng, Yu Fang, Olav Rueppell, Jianke Li
Elife. doi: 10.7554/eLife.64830. (IF 7.08)
5. Zhou X, Yan T, Huang C, Xu Z, Wang L, Jiang E, Wang H, Chen Y, Liu K, Shao Z, Shang Z
J EXP CLIN CANC RES 2018 Oct 3;37(1):242. (IF 7.068)
7. Haiqin Huang, Kang Sha, Hanitrarimalala Veroniaina, Ziheng Wu, Zhenghong Wu, Xiaole Qi
Nanoscale. doi: 10.1039/d0nr00547a. (IF 6.895)
8. Sun J, Huang P, Liang J, Li J, Shen M, She X, Feng Y, Luo X, Liu T, Sun X.
Cell Death Dis 2017 Oct 12;8(10):e3115. (IF 6.304)
9. Wei YL, Yang WX
Cell Death Dis. 10(6):402. (IF 6.304)
10. Lan Jin, Yunhe Chen, Dan Cheng, Zhikai He, Xinyi Shi, Boyu Du, Xueyan Xi, Yujing Gao, Yang Guo
Cell Death Dis. doi: 10.1038/s41419-021-03722-8. (IF 6.304)
11. Xin Zhang, Can Hu, Yu-Pei Yuan, Peng Song, Chun-Yan Kong, Hai-Ming Wu, Si-Chi Xu, Zhen-Guo Ma, Qi-Zhu Tang
Cell Biol Toxicol. doi: 10.1007/s10565-021-09581-5. (IF 6.284)
12. Ya-Nan Sun, Ban Liu, Jia-Jian Wang, Xiu-Miao Li, Jun-Ya Zhu, Chang Liu, Jin Yao, Yu-Ling Zhong, Qin Jiang, Biao Yan
Genomics. doi: 10.1016/j.ygeno.2020.09.055. (IF 6.205)
14. Zhang L, Feng M, Li Z, Zhu M, Fan Y, Chu B, Yuan C, Chen L, Lv H, Hong Z, Hong D
J Cell Physiol 2018 Sep;233(9):7067-7079. (IF 5.546)
15. Xiang-Kun Wang, Xi-Wen Liao, Cheng-Kun Yang, Zheng-Qian Liu, Quan-Fa Han, Xin Zhou, Lin-Bo Zhang, Teng Deng, Yi-Zhen Gong, Jian-Lu Huang, Rui Huang, Chuang-Ye Han, Ting-Dong Yu, Hao Su, Xin-Ping Ye, Tao Peng, Guang-Zhi Zhu
J Cell Physiol. doi: 10.1002/jcp.29596. (IF 5.546)
16. Wei Zhang, Weiduo Hou, Mo Chen, Erman Chen, Deting Xue, Chenyi Ye, Weixu Li, Zhijun Pan
Front Cell Dev Biol. doi: 10.3389/fcell.2020.576104. (IF 5.201)
17. Ze-Hui Shi, Xiao-Yan Han, Mu-Di Yao, Chang Liu, Qin Jiang, Biao Yan
Front Cell Dev Biol. doi: 10.3389/fcell.2021.773050. (IF 5.201)
18. Jing Guo, Shuai He, Yongjie Zhu, Wei Yu, Dong Yang, Xudong Zhao
Front Cell Dev Biol. doi: 10.3389/fcell.2021.775599. (IF 5.201)
19. Xiang-Kun Wang, Xi-Wen Liao, Xin Zhou, Chuang-Ye Han, Zi-Jun Chen, Cheng-Kun Yang, Jian-Lu Huang, Jian-Yao Wang, Jun-Qi Liu, Hua-Sheng Huang, Shu-Tian Mo, Xin-Ping Ye, Guang-Zhi Zhu, Tao Peng
Am J Cancer Res. (IF 5.177)
20. Wang Z, Lv Z, Li C, Shao Y, Zhang W, Zhao X
Int J Biol Macromol 2018 Jul 1;113:1167-1181. (IF 5.162)
21. Kai Hang, Li Ying, Jinwu Bai, Yibo Wang, Zhihui Kuang, Deting Xue, Zhijun Pan
Stem Cell Res Ther. doi: 10.1186/s13287-021-02581-6. (IF 5.116)
23. Gao X, Zhao H, Diao C, Wang X, Xie Y, Liu Y, Han J, Zhang M.
BIOCHEM BIOPH RES CO 2017 Nov 21. pii: S0006-291X(17)32302-1. (IF 2.985)
26. Zhang CX, Chen J, Cai L, Wu J, Wang JY, Cao LF, Zhou W, Chen TX
Mol Immunol 2018 Feb;94:166-175. (IF 3.641)
28. Zhan XY, Zhang Y, Zhai E, Zhu QY, He Y
PeerJ 2018 May 29;6:e4829. (IF 2.379)
29. Sun Y, Wang Y, Yang H, Xu Y, Yu H
INT J CLIN EXP PATHO. 11(5):2522-2529. eCollection 2018. (IF 0.252)
31. Wei X, Zhao T, Ai K, Li H, Jiang X, Li C, Wang Q, Yang J, Zhang R, Yang J
Dev Comp Immunol 2018 Jul;84:14-27. (IF 3.192)
32. Jiang YL, Zhao ZY, Li BR, Yang F, Li J, Jin XW, Wang H, Yu ED, Sun SH, Ning SB
BMC Med Genet 2018 Aug 9;19(1):141. (IF 1.585)
34. He J, Zhang B, Gan H
Inflammation 2018 Oct;41(5):1912-1921. (IF 3.212)
35. Liu Q, Hu Y, Zhang M, Yan Y, Yu H, Ge L
Neuropsychiatr Dis Treat 2018 Oct 23;14:2773-2782.
38. Wang S, Liu S, Xu L, Zhu X, Liu W, Tian L, Chen Y, Wang Y, Nagendra BVP, Jia S, Liang L, Huo FQ
Mol Pain. 15:1744806919857297. (IF 2.696)
39. Luo S, Li Z, Mao L, Chen S, Sun S
J Physiol Biochem. 75(1):53-63. (IF 2.952)
42. Li L, Li L, Zhou X, Yu Y, Li Z, Zuo D, Wu Y
Nanotoxicology. 13(3):369-391. (IF 4.925)
43. Zhu D, Huang R, Fu P, Chen L, Luo L, Chu P, He L, Li Y, Liao L, Zhu Z, Wang Y
Int J Mol Sci. 20(7). pii: E1687. (IF 4.556)
44. Tan Y, Ma Z, Jin Y, Zong R, Wu J, Ren Z
Gene. 701:65-71. (IF 2.984)
45. Zhu D, Li Y, Huang R, Luo L, Chen L, Fu P, He L, Li Y, Liao L, Zhu Z, Wang Y
FISH SHELLFISH IMMUN. 90:395-403. (IF 3.298)
46. Han L, Ding J, Wang H, Zuo R, Quan Z, Fan Z, Liu Q, Chang Y
Gene. 705:133-141. (IF 2.984)
47. Hou Y, Li X, Peng S, Yao J, Bai F, Fang J
J AGR FOOD CHEM. 67(29):8227-8234. (IF 4.192)
48. Liu W, Huai R, Zhang Y, Rao S, Xiong L, Ding R, Mao C, Zhao W, Hao T, Huang Q, Guo Z
Genes Genomics. 41(8):951-959.
49. Yang Y, Zhang M, Jin C, Ding Y, Yang M, Wang R, Zhou Y, Zhou Y, Li T, Wang K, Hu R
J Cell Biochem. 120(10):17744-17756. (IF 4.237)
51. Lou K, Huang P, Ma H, Wang X, Xu H, Wang W
Drug Chem Toxicol. (IF 2.405)
52. Zhu D, Fu P, Huang R, Xiong L, Wang Y, He L, Liao L, Li Y, Zhu Z, Wang Y
FISH SHELLFISH IMMUN. 94:455-463. (IF 3.298)
53. Xu N, Bo Q, Shao R, Liang J, Zhai Y, Yang S, Wang F, Sun X
INVEST OPHTH VIS SCI. 60(14):4596-4605. (IF 3.47)
54. Shen J, Wang J, Du J, Wang L, Zhou X, Chang X, Li Z, Zhai X, Zuo D, Wu Y
TOXICOL APPL PHARM . 383:114781. (IF 3.616)
56. Bingke Sun, Shumin Xu, Yanli Yan, Yusheng Li, Hongqiang Li, Guizhen Zheng, Tiancao Dong, Jianwen Bai
Curr Pharm Biotechnol. doi: 10.2174/1389201021666191210115614.
57. Liang L, Zhang J, Tian L, Wang S, Xu L, Wang Y, Guo-Shuai Q, Dong Y, Chen Y, Jia H, Yang X, Yuan C
Mol Pain. 16:1744806919900814. (IF 2.696)
58. Xian-Zhe Huang, Jun Huang, Wen-Zhao Li, Jun-Jie Wang, De-Ye Song, Jiang-Dong Ni
Steroids. doi: 10.1016/j.steroids.2019.108533. (IF 1.948)
59. Yanting You, Qiuxing He, Hanqi Lu, Xinghong Zhou, Liqian Chen, Huaxi Liu, Zibin Lu, Dongyi Liu, Yanyan Liu, Daming Zuo, Xiuqiong Fu, Hiuyee Kwan, Xiaoshan Zhao
Front Pharmacol. doi: 10.3389/fphar.2020.00271. (IF 4.225)
60. Zhenfei Ding, Wei Lu, Ce Dai, Wei Huang, Fuen Liu, Wenshan Shan, Chao Cheng, Jiegou Xu, Zongsheng Yin, Wei He
Int Immunopharmacol. doi: 10.1016/j.intimp.2020.106367. (IF 3.943)
61. Denghui Zhu, Rong Huang, Pengfei Chu, Liangming Chen, Yangyu Li, Libo He, Yongming Li, Lanjie Liao, Zuoyan Zhu, Yaping Wang
Dev Comp Immunol. doi: 10.1016/j.dci.2019.103567. (IF 3.192)
62. Yang Y, Li N, Qiu J, Ge H, Qin X
Int J Mol Sci. 21(7). pii: E2469. (IF 4.556)
63. Cong Han, Qian Du, Lei Zhu, Nannan Chen, Le Luo, Qiao Chen, Jiatong Yin, Xingchen Wu, Dewen Tong, Yong Huang
Vet Res. doi: 10.1186/s13567-020-00783-z. (IF 3.357)
64. Jingyi Tan, Wenfeng Xu, Lei Lei, Hui Liu, Hong Wang, Xian Cao, Man Xu
ONCOTARGETS THER. doi: 10.2147/OTT.S228656. (IF 3.337)
65. Zhao-Peng Wang, Yan Che, Heng Zhou, Yan-Yan Meng, Hai-Ming Wu, Ya-Ge Jin, Qing-Qing Wu, Sha-Sha Wang, Yuan Yuan
Int J Mol Med. doi: 10.3892/ijmm.2020.4531. (IF 3.098)
66. Weili Wang, Zhaoyuan Zhang, Xingyi Kuang, Dan Ma, Jie Xiong, Tingting Lu, Yaming Zhang, Kunling Yu, Siyu Zhang, Jishi Wang, Qin Fang
Am J Transl Res. (IF 3.375)
67. Zhengjun Wang, Jie Yan, Fan Yang, Dengyun Wang, Yuan Lu, Li Liu
FREE RADICAL RES. doi: 10.1080/10715762.2020.1781847. (IF 2.839)
68. Xiang Ren, Ying-Xia Jing, Zhi-Wen Zhou, Qi-Ming Yang
Int J Neurosci. doi: 10.1080/00207454.2020.1806836. (IF 2.107)
69. Lu Yang, Yukai Jing, Wenjie Wang, Wenjing Ying, Li Lin, Jiang Chang, Li Luo, Danqing Kang, Panpan Jiang, Ju Liu, Qiuyue Chen, Heather Miller, Andrés A Herrada, Masato Kubo, Jinqiao Sun, Chaohong Liu
BIOCHEM BIOPH RES CO. doi: 10.1016/j.bbrc.2020.05.152. (IF 2.985)
70. Chengjie Xia, Wenyi Tang, Ping Geng, Haiyan Zhu, Wei Zhou, Hai Huang, Pei Zhou, Xunlong Shi
TOXICOL APPL PHARM . doi: 10.1016/j.taap.2020.115131. (IF 3.616)
71. Chengsheng Li, Xiaoyi Zhong, Wenyu Xia, Jin He, Hua Gan, HongFei Zhao, Yunfeng Xia
Microvasc Res. doi: 10.1016/j.mvr.2020.104037. (IF 2.73)
72. Xu Fan, Min Zhu, Fen Qiu, Wenbo Li, Minghua Wang, Yang Guo, Xueyan Xi, Boyu Du
Int Immunopharmacol. doi: 10.1016/j.intimp.2020.106991. (IF 3.943)
73. Yu Wang, Peihong Zhou, Ping Li, Fengxia Yang, Xue-Qiang Gao
Bioengineered. doi: 10.1080/21655979.2020.1761512. (IF 2.205)
74. Xiao-Ling Zhu, Tao Li, Yu Cao, Qing-Ping Yao, Xing Liu, Ying Li, Yang-Yang Guan, Ji-Jun Deng, Rui Jiang, Jun Jiang
Mol Ther Nucleic Acids. doi: 10.1016/j.omtn.2020.12.010.
75. Xingyi Kuang, Jie Xiong, Tingting Lu, Weili Wang, Zhaoyuan Zhang, Jishi Wang
Int J Med Sci. doi: 10.7150/ijms.47597. (IF 2.523)
76. Nanxuan Luo, Changqing Yang, Yurong Zhu, Qianfeng Chen, Baoshun Zhang
J Agric Food Chem. doi: 10.1021/acs.jafc.0c06652.
77. Qi Gao, Ningqing Chang, Donglian Liu
J Int Med Res. doi: 10.1177/0300060520986351. (IF 1.287)
78. Dongmei Mai, Rongqing Chen, Ji Wang, Jiawei Zheng, Xiuping Zhang, Shaogang Qu
J Cell Mol Med. doi: 10.1111/jcmm.16212. (IF 4.486)
79. Kandi Xu, Huize Han, Yexin Luo, Hong Ye, Hongxia Lin, Lei Ni
Front Oncol. doi: 10.3389/fonc.2021.663671. (IF 4.848)
80. Yu-Wei Wan, Wang Liu, Mu-Ting Feng, Jun Pu, Shao-Wei Zhuang, Ben He, Xuan Liu
Blood Cells Mol Dis. doi: 10.1016/j.bcmd.2021.102568.
81. Ling Li, Shuyun Liu, Yijie Zhou, Meng Zhao, Yizhuo Wang, Chengshi Wang, Peng Lou, Rongshuang Huang, Liang Ma, Yanrong Lu, Ping Fu, Jingping Liu
J Cell Mol Med. doi: 10.1111/jcmm.16934. (IF 4.486)
82. Jia-Bao Hou, Qian-Ni Shen, Xing Wan, Xu-Ke Liu, Yuan Yu, Mei Li, Wen-Wei Gao, Bo Zhao
Oxid Med Cell Longev. doi: 10.1155/2021/6955628. (IF 5.076)
83. Fei Zhu, Ermin Luo, Fei Yi, Jianzhong Xiong, Chun Huang, Runying Li
Neuroreport. doi: 10.1097/WNR.0000000000001732. (IF 1.394)
84. Yangyu Li, Rong Huang, Liangming Chen, Yangyang Li, Yongming Li, Lanjie Liao, Libo He, Zuoyan Zhu, Yaping Wang
Dev Comp Immunol. doi: 10.1016/j.dci.2021.104202. (IF 3.192)
85. Xing He, Jun Tang, He-Zhong Yan, Jiao-Xue Wang, Hai-Qing Li, Xiao-Wei Duan, Sen-Yuan Yu, Xi-Lu Hou, Guo-Bin Liao, Wei Liu
Aging (Albany NY). doi: 10.18632/aging.203751.
86. Yuanjie Yu, Chunping He, Shiyun Tan, Mengjun Huang, Yitian Guo, Ming Li, Qian Zhang
Anal Cell Pathol (Amst). doi: 10.1155/2021/4853355.
87. Zishuang Liu, Shanshan Chen, Xinfeng Zhang, Fangfang Liu, Kai Yang, Ge Du, Xi Rui
Drug Dev Res. doi: 10.1002/ddr.21839.